تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 743 |
تعداد مقالات | 7,077 |
تعداد مشاهده مقاله | 10,166,368 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 6,862,520 |
کارایی استفاده از پری بیوتیک سانیار در محیط بایوفلاک: بررسی عملکـرد تولید، ترکیبات نیتروژنی آب، فراسنجه های خون شناسی و سوخت و ساز ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) | ||
تغذیه آبزیان | ||
دوره 7، شماره 2 - شماره پیاپی 16، تیر 1400، صفحه 39-55 اصل مقاله (708.67 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22124/janb.2022.21549.1162 | ||
نویسندگان | ||
سمیرا جعفریان؛ حسین آدینه* ؛ محمد فرهنگی؛ محمد هرسیج؛ ضیاء کردجزی | ||
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، گنبد کاووس، گلستان | ||
چکیده | ||
این مطالعه به منظور بررسی اثرات بالقوه پریبیوتیک سانیار بر عملکرد تولید، ترکیبات نیتروژن آب، فراسنجههای خون و سوخت و سازی ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) پرورش یافته در روش بایوفلاک انجام شد. تعداد 324 قطعه ماهی انگشتقد (45/0 ± 09/10 گرم) در 18 مخزن 35 لیتری (18 ماهی در هر مخزن) ذخیرهسازی شدند. 6 گروه آزمایشی پس از 10 روز سازگاری با شرایط آزمایشگاه به مدت 60 روز آزمایش شدند که شامل: گروه شاهد بدون افزودنی با آب تمیز (C)، گروه شاهد بدون افزودنی با فلاک (FC)، گروههای فلاک با 1/0 و 2/0 گرم پریبیوتیک پودری (FP1, FP2) و گروههای فلاک با 1 و 2 میلیلیتر پریبیوتیک مایع (FL1 , FL2) در 100 گرم غذای پایه بود. در پایان آزمایش نیز وزن نهایی توده زنده، تراکم نهایی و کارایی تبدیل پروتئین در گروه FP1 بهطور معنیداری افزایش و نسبت تبدیل غذایی در مقایسه با دیگر گروهها کاهش یافت. آمونیاک کل آب در گروههای بایوفلاک حاوی مکمل پریبیوتیک در مقایسه با گروه بایوفلاک بدون پریبیوتیک (FC) کاهش یافت. مقادیر اوره و کراتینین سرم خون بهطور معنیدار در گروه FC در مقایسه با دیگر گروههای آزمایشی افزایش یافت. آنزیمهای ALT، AST و ALP در گروههای C و FC در مقایسه با گروههای تغذیه شده با پریبیوتیک سانیار بهطور معنیدار افزایش داشتند. بیشترین تعداد گلبولهای سفید و قرمز به ترتیب در گروههای FL1 و FC بهدست آمد. در مجموع، مکمل غذایی FP1 (1/0 گرم پریبیوتیک سانیار در هر 100 گرم جیره پایه) را میتوان بهطور بالقوه بهعنوان تقویتکننده سلامت در ماهی کپور معمولی پرورشیافته در روش بایوفلاک استفاده کرد. | ||
کلیدواژهها | ||
ماهی کپور معمولی؛ عملکرد تولید؛ پارامترهای خونی؛ فناوری بیوفلاک | ||
مراجع | ||
آدینه، ح.، هرسیج، م. 1397. تأثیر سطوح مختلف بایوفلاک بر کیفیت آب، عملکرد رشد و بازماندگی پست لارو میگوی وانامی (Litopenaeus vannamei). تحقیقات دامپزشکی 73: 401-393.
بیواره، م. ر.، جعفریان، ح. 1396. تأثیر پربیوتیک ایمکس بر عملکردهای رشد، کارایی تغذیه و برخی از فاکتورهای بیوشیمیایی سرم خون بچه ماهیان انگشت قد کپور معمولی. فیزیولوژی و تکوین جانوری 1: 27-13.
بیواره، م. ر.، جعفریان، ح. 1396. مقایسه عملکردهای رشد، وضعیت تغـذیه، بقاء و مـقاومت در برابر استرسهای محیطی در بچه ماهیان نورس کپور معمولی (Cyprinus carpio Linnaeus 1758) با جیرههای غذایی مکمل سازی شده توسط دو پربیوتیک تجاری ایمکس و ایمکس اولترا. علوم و فنون دریایی 12: 63-46.
خسروی، آ.، جعفریان، ح.، آدینه، ح.، هرسیج، م. 1399. تاثیر دو پربیوتیک ایمکساولترا و سلماناکس مایع به صورت تلقیح بر کیفیت آب، عملکرد رشد و ترکیبات لاشه بچه ماهیان انگشتقد کپور معمولی (Cyprinus carpio). محیط زیست جانوری 12: 188-177.
خضرائینیا، پ.، پیغان، ر.، آذری تاکامی، ق. 1379. بررسی تغییرات برخی آنزیمهای سرمی،اوره و کلسترول خون ماهی کپور معمولی در مسمومیت تجربی حاد با آمونیاک. تحقیقات دامپزشکی 55: 32-29.
رنجدوست، م.، جعفریان، ح.، هرسیج، م.، قلیپور کنعانی، ح. 1397. تاثیر پریبیوتیک سلماناکس و پنج گونه از پروبیوتیکهای باسیلی بر کاهش استرس حملو نقل کپور معمولی (Cyprinus carpio) در شوریهای مختلف. علوم آبزیپروری 6: 50-39.
فرهنگی، م.، کر، ع. 1399. تأثیر پری بیوتیک مانان الیگوساکارید بر عملکرد رشد، بازماندگی و مقاومت به تنش شوری در بچه ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). بوم شناسی آبزیان ۱۰: ۸۱-۷۵.
قاسمپور دهاقانی، پ.، جواهری بابلی، م.، ضیائینژاد، س.، تقوی مقدم، ا.، پورهادی، م. 1392. بررسی اثر مکمل غذایی سینبیوتیک بایومین ایمبو به عنوان مکمل غذایی بر عملکرد رشد، بازماندگی و فلور باکتریایی روده ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) انگشت قد. توسعه آبزی پروری ۷: ۵۲-۴۳.
کریمتبار، ف.ز.، جعفریان، ح.، آدینه، ح. 1398. تاثیر افزودن پروبیوتیکهای تجاری در سازگان بایوفلاک: بررسی کیفیت آب، عملکرد رشد و تغذیه و ترکیبات بیوشیمیایی بدن ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). علوم آبزی پروری 7: 151-141.
محمودیان، ا.، کرامت امیرکلایی، ع.، اکرمی، ر.، بهلکه، ا. 1394. بررسی اثر پری بیوتیک آلفامیون و پروبیوتیک پروتکسین به صورت انفرادی و ترکیبی بر رشد بچه ماهیان کپـور معمولی (Cyprinus carpio). پژوهشهای ماهیشناسی کاربردی ۳: ۱۰۴-۹۳.
واعظ، ر.، محمدی آذرم، ح.، موسوی، س. م.، رجبزاده، ا. 1396. اثر مکمل های گیاهی و اینولین بر فعالیت آنزیم های آنتیاکسیدانی در ماهی جوان کپور معمولی (Cyprinus carpio). دامپزشکی ایران 13: 121-115.
Adhikari, S., Sarkar, B., Chatterjee, A., Mahapatra, C. T., Ayyappan, S. 2004. Effects of cypermethrin and carbofuran on certain hematological parameters and prediction of their recovery in a freshwater teleost, Labeo rohita (Hamilton). Ecotoxicology and Environmental Safety 58: 220-226. Adineh, H., Naderi, M., Hamidi, M. K., Harsij, M. 2019. Biofloc technology improves growth, innate immune responses, oxidative status, and resistance to acute stress in common carp (Cyprinus carpio) under high stocking density. Fish & Shellfish Immunology 95: 440-448. APHA. 1998. Standard Methods for the Examination of the Water and Wastewater, 22nd ed. American Public Health Association, Washington, DC. Avnimelech, Y., Kochba, M. 2009. Evaluation of nitrogen uptake and excretion by tilapia in biofloc tanks, using N-15 tracing. Aquaculture 287: 163-168. Azim, M.E., Little, D.C. 2008. The biofloc technology (BFT) in indoor tanks: water quality, biofloc composition, and growth and welfare of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture 283: 29-35. Birkbeck, T.H., Ringø, E. 2005. Pathogenesis and the gastrointestinal tract of growing fish. In: Mosenthin, R., Zentek, J., Zebrowska, T. 2005. Biology of Growing Animals. Elsevier, 640P. Crab, R., Defoirdt, T., Bossier, P. Verstraete, W. 2012. Biofloc technology in aquaculture: beneficial effects and future challenges. Aquaculture 356-357: 351-356. De Schryver, P., Crab, R., Defoirdt, T., Boon, N., Verstraete, W. 2008. The basics of bio-flocs technology: the added value for aquaculture. Aquaculture 277: 125-137. Ebeling, J.M., Timmons, M.B., Bisogni, J.J. 2006. Engineering analysis of the stoichiometry of photoautotrophic, autotrophic, and heterotrophic removal of ammonia-nitrogen in aquaculture systems. Aquaculture 257: 346-358. Emerenciano, M., Ballester, E.L., Cavalli, R.O., Wasielesky, W. 2012. Biofloc technology application as a food source in a limited water exchange nursery system for pink shrimp Farfantepenaeus brasiliensis (Latreille, 1817). Aquaculture Research 43: 447-457. Feldman, B.F., Zinkl, J.G., Jian, N.C. 2000. Schalm's veterinary hematology, 3nd edn. Lippincott Williams and Wilkins publication, Philadelphia, USA. pp. 32-36. Hargreaves, J.A. 2013. Biofloc production systems for aquaculture (Vol. 4503, pp. 1-11). Stoneville, MS: Southern Regional Aquaculture Center. Harikrishnan, R., Balasundaram, C., Heo, M.S. 2011. Impact of plant products on innate and adaptive immune system of cultured finfish and shellfish. Aquaculture 317: 1-15. Hoseinifar, S.H., Eshaghzadeh, H., Vahabzadeh, H., Peykaran Mana, N. 2016. Modulation of growth performances, survival, digestive enzyme activities and intestinal microbiota in common carp (Cyprinus carpio) larvae using short chain fructooligosaccharide. Aquaculture Research 47: 3246-3253. Khanjani, M.H., Sajjadi, M.M., Alizadeh, M., Sourinejad, I. 2017. Nursery performance of Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei Boone, 1931) cultivated in a biofloc system: the effect of adding different carbon sources. Aquaculture Research 48: 1491-1501. Lee, R.G., Foerster, J., Jukens, J., Paraskevas, F., Greer, J.P., Rodgers, G.M. 1998. Wintrobe’s-Clinical Hematology, 10th ed., Lippincott Williams & Wilkins, New York. Liu, G., Deng, Y., Verdegem, M., Ye, Z., Zhu, S. 2019. Using poly (β-hydroxybutyrate-β-hydroxyvalerate) as carbon source in biofloc-systems: Nitrogen dynamics and shift of Oreochromis niloticus gut microbiota. Science of the Total Environment 694: 133664. Long, L., Yang, J., Li, Y., Guan, C., Wu, F. 2015. Effect of biofloc technology on growth, digestive enzyme activity, hematology, and immune response of genetically improved farmed tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture 448: 135-141. Martínez‐Córdova, L. R., Emerenciano, M., Miranda‐Baeza, A., Martínez‐Porchas, M. 2015. Microbial‐based systems for aquaculture of fish and shrimp: an updated review. Reviews in Aquaculture 7: 131-148. Najdegerami, E.H., Bakhshi, F., Lakani, F.B. 2016. Effects of biofloc on growth performance, digestive enzyme activities and liver histology of common carp (Cyprinus carpio L.) fingerlings in zero-water exchange system. Fish Physiology and Biochemistry 42: 457-465. Pagano, M., Vazzana, I., Gentile, A., Caracappa, G., Faggio, C. 2019. Hematological and biochemical parameters in Sea turtles (Caretta caretta) after stranding. Regional Studies in Marine Science 32: 100832. Pathiratne, A., Rajapakshe, W. 1998. Hematological changes associated with the epizootic ulcerative syndrome in the Asian cichlid fish, Etroplus suratensis. Asian Fisheries Science 11: 203-212. Pauly, D., Christensen, V., Guenette, S., Pitcher, T.J., Sumaila, U.R., Walters, C.J., Watson, R., Zeller, D. 2002. Towards sustainability in world fisheries. Nature 418: 689-695. Perrault, J.R., Stacy, N.I., Lehner, A.F., Poor, S.K., Buchweitz, J.P., Walsh, C.J. 2017. Toxic elements and associations with hematology, plasma biochemistry, and protein electrophoresis in nesting loggerhead sea turtles (Caretta caretta) from Casey Key, Florida. Environmental Pollution 231: 1398-1411. Qiao, G., Chen, P., Sun, Q., Zhang, M., Zhang, J., Li, Z., Li, Q. 2020. Poly-β-hydroxybutyrate (PHB) in bioflocs alters intestinal microbial community structure, immune-related gene expression and early Cyprinid herpesvirus 2 replication in gibel carp (Carassius auratus gibelio). Fish and Shellfish Immunology 97: 72-82. Sano T. 1960. Haematological studies of the culture fishes in Japan. Journal of the Tokyo University of Fisheries 46: 98-87. Serradell, A., Torrecillas, S., Makol, A., Valdenegro, V., Fernández-Montero, A., Acosta, F., Montero, D. 2020. Prebiotics and phytogenics functional additives in low fish meal and fish oil based diets for European sea bass (Dicentrarchus labrax): effects on stress and immune responses. Fish and Shellfish Immunology 100: 219-229. Staykov, Y., Spring, P., Denev, S., Sweetman, J. 2007. Effect of a mannan oligosaccharide on the growth performance and immune status of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture International 15: 153-161. Tohidi, M., Harati, H., Hadaegh, F., Mehrabi, Y., Azizi, F. 2007. Association of liver enzymes with incident type 2 diabetes: Tehran lipid and glucose study. Iranian Journal of Diabetes and Metabolism 7: 167-176. Xu, W.J., Pan, L.Q. 2013. Enhancement of immune response and antioxidant status of Litopenaeus vannamei juvenile in biofloc-based culture tanks manipulating high C/N ratio of feed input. Aquaculture 412: 117-124. Yousefi, S., Shokri, M.M., Noveirian, H.A., Hoseinifar, S.H. 2020. Effects of dietary yeast cell wall on biochemical indices, serum and skin mucus immune responses, oxidative status and resistance against Aeromonas hydrophila in juvenile Persian sturgeon (Acipenser persicus). Fish and Shellfish Immunology 106: 464-472. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 530 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 436 |