تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 738 |
تعداد مقالات | 6,944 |
تعداد مشاهده مقاله | 9,889,212 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 6,704,225 |
پایش حساسیت جمعیتهای مختلف پسیل پسته Agonoscena pistaciae (Hem.: Psyllidae) در برابر ایمیداکلوپرید و کلرپایریفوس در باغهای پسته | ||
تحقیقات آفات گیاهی | ||
دوره 11، شماره 1، خرداد 1400، صفحه 15-29 اصل مقاله (1.26 M) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22124/iprj.2021.4842 | ||
نویسندگان | ||
لیلا کمالی دماوندی1؛ محبوبه شریفی* 2؛ نرگس معماری زاده3؛ محمد قدمیاری4 | ||
1موسسه آموزش عالی جهاد دانشگاهی کاشمر، سازمان جهاد دانشگاهی خراسان رضوی، ایران | ||
2بخش تحقیقات گیاهپزشکی، مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان گلستان، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، گرگان، ایران | ||
3بخش تحقیقات آفتکشها، موسسه تحقیقات گیاهپزشکی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران | ||
4گروه گیاهپزشکی، دانشکده علوم کشاورزی، دانشگاه گیلان، رشت، ایران | ||
چکیده | ||
استفاده مکرر و گسترده از آفتکشهای گوناگون به منظور کنترل پسیل معمولی پسته (Agonoscenapistaciae)،به عنوان مهمترین آفت درختان پسته، احتمال بروز کاهش حساسیت به آفتکشها را در این آفت فراهم کرده است. در این پژوهش، با انجام زیستسنجی به روش غوطهوری دیسک برگی و براساس دز افتراقی، حساسیت 13 جمعیت پسیل پسته جمعآوری شده از باغهای پسته بردسکن، خلیلآباد و فیضآباد نسبت به حشرهکشهای ایمیداکلوپرید و کلرپایریفوس مورد بررسی قرار گرفت. نتایج آزمون زیستسنجی نشان داد که میزان LC50حشرهکشهای ایمیداکلوپرید و کلرپایریفوس روی جمعیت حساس به ترتیب برابر با 2/261 و 03/83 میلی گرم در لیتر است. نتایج آزمونهای زیستسنجی جمعیتها تحت تاثیر دز افتراقی (یعنی LC90 جمعیت حساس) نشان داد که همه جمعیتهای مختلف پسیل پسته مورد آزمایش، نسبت به کلرپایریفوس حساس هستند؛ ولی نتایج زیستسنجی ایمیداکلوپرید حاکی از وجود اختلاف معنیدار در میزان حساسیت جمعیتهای مختلف به این آفتکش نسبت به جمعیت حساس است. بیشترین درصد تلفات با کاربرد دز افتراقی، مربوط به جمعیت کندر حساس و کمترین آن مربوط به جمعیتهای جلالآباد، ظاهرآباد و کندر مقاوم بود. در آزمونهای بیوشیمیایی، اندازهگیری فعالیت استرازی بیانگر آن است که یکی از سازوکارهای کاهش حساسیت پسیل پسته به ایمیداکلوپرید افزایش فعالیت استرازی است؛ بهطوری که فعالیت این آنزیم در جمعیت حساس 5/2 برابر کمتر از جمعیت های با حساسیت پایینتر بود. همچنین بررسی الگوی باندی این آنزیم در تحلیل زایموگرامی نشان دادکه تمام جمعیتها دارای دو ایزوفرم آنزیمی هستند که در جمعیتهای مختلف با جمعیت حساس از لحاظ کیفی متفاوت میباشد. علاوه بر این، اندازهگیری فعالیت آنزیم گلوتاتیوناس-ترانسفراز نشان داد که این سامانه آنزیمی نیز در کاهش حساسیت پسیل پسته به ایمیداکلوپرید درگیر است. | ||
کلیدواژهها | ||
Agonoscena pistaciae؛ دز افتراقی؛ ایمیداکلوپرید؛ کلرپایریفوس؛ آنزیمهای سمزدا | ||
مراجع | ||
Ahmadi, K., Ebadzadeh, H., Hatami, F., Hosseinpour, R. and Abdshah, H. 2018. Agricultural Statistics, Volume 3: Horticultural Products. Ministry of Jihad Agriculture, Deputy of Planning and Economy, Information and Communication Technology Center, pp: 241.
Alizadeh, A., Talebi, K., Hosseininaveh, V. and Ghadamyari, M. 2013. Susceptibility of different populations of common pistachio psyllids Agonoscena pistaciae to pesticides amitrase and imidacloprid in Kerman province. Iranian Journal of Plant Protection Science 44(1): 153-161. (In Farsi)
Alizadeh, A., Talebi, K., Hosseininaveh, V. and Ghadamyari, M. 2011. Metabolic resistance mechanisms tophosalone in the common pistachio psyllid, Agonoscena pistaciae (Hem.: Psyllidae). Pesticide Biochemistry and Physiology 2: 59-64.
Berrada, S., Nguyen, T. X., Lemoine, J., Vanpoucke, J. and Fournier, D. 1995. Thirteen pear species and cultivars evaluated for resistance to Cacopsylla pyri (Homoptera: Psyllidae), Environmental Entomology 24: 1604-1607.
Bradford, M. M. 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry 72: 248-254.
Brewer, M. J. and Trumble, J. T. 1989. Field Monitoring for Insecticide Resistance in Beet Armyworm (Lepidoptera: Noctuidae). Entomological Society of America 82(6): 1520-1526.
Burckhardt, D. and Lauterer, P. 1993. The Jumping Plant-lice of Iran (Homoptera: Psylloidea). Revue Suisse de Zoologie 100(4): 829-898.
Castellanos, N. L., Haddi, K., Carvalho, G. A., Paulo, P.D., Hirose, E., Narciso, R., Guedes, C., Smagghe, and Eugênio, E. O. 2018. Imidacloprid resistance in the Neotropical brown stink bug Euschistus heros: selection and fitness costs, Journal of Pest Science 120: 1-14.
Davis, B. J. 1964. Disc electrophoresis II. Method and application to human serum proteins. Annals of the New York Academy of Sciences 121: 404-427.
Fournier, D. J., Bride, M. Hoffmann, F. and Karch, F. 1992. Acetylcholinesterase. Two types of modifications confer resistance to insecticide. Journal of Biological Chemistry 267 (20): 14270–14274.
Field, L. M., Devonshire, A. L. and Forde, B. G. 1988. Molecular evidence that insecticide resistance in peach-potato aphids (Myzus persicae Sulz.) results from amplification of an esterase gene. Journal of Biochemistry 251: 309-312.
Foster, P. S., Kift, N. B., Baverstock, J., Sime, S., Reynolds, K., Jones, J. E., Thompson, R. and Tatchell, G. M. 2003. Association of MACE-based insecticide resistance in Myzus persicae with reproductive rate, response to alarm pheromone and vulnerability to attack by Aphidius colemani. Pest Management Science 59: 1169-1178.
Gao, J. R., Kyong, S. Y., Richard, K. F., Gerald, C. and Marshall, C. 2005. Esterase-mediated Malathion resistance in the human head louse, Pediculus capitis (Anoplura: Pediculidae). Pesticide Biochemistry and Physiology 42: 17-27.
Grant, D. F. and Matsumura, F. 1988. Glutathione S-transferase-1 in Aedes aegypti larvae. Purification and properties. Insect Biochemistry18: 615-622.
Galaeian, M. 2008. Investigation of live natural control factors of common pistachio psyllids and introduction of dominant species due to population abundance and distribution in Khorasan Razavi province, Khorasan Razavi: Pistachio Research Institute, 85018-7803-05-150000-100. (In Farsi)
Kanga, L. H. B., Eason, J., Haseeb, M., Qureshi, J. and Stansly, P. 2015. Monitoring for insecticide resistance in Asian Citrus Psyllid (Hemiptera: Psyllidae) populations in Florida. Journal of Economic Entomology 12(2): 1-5.
Keita, S. M., Vincent, C., Schmit, J. P. and Belanger, A. 2000. Essential oil composition of Ocimum basilicum L., O. gratissimum L. and O. suave L. in the Republic of Guinea. Flavor and Fragrance Journal 15: 339–341.
Kono, Y. and Tomita, T. 1992. Characteristics of highly active carboxylesterases in insecticide- resistant Culex pipiens quinquefasciatus. Japanese Journal of Sanitary Zoology 43(4): 297-305.
Lababidi, M.S. 2002. Effects of Neem Azal T/S and other insecticides against the pistachio psyllid Agonoscena targionii (Licht.) (Homoptera, Psyllidae) under field conditions in Syria. Journal of Pesticide Science 75: 84-8.
LeOra Software. 2006. POLO-Plus. A user's guide to Probit or Logit analysis. LeOra Software, Berkeley, CA.
Habig, W. H., Pabst, M. J. and Jakoby, W. B. 1974. Glutathione s- transferase, the first step in mercapturic acid formation. Journal of Biology and Chemistry 249: 7130-7139.
Limoee, M., Enayati, A. A., Khassi, K., Salimi, M. and Ladonni, H. 2011. Insecticide resistance and synergism of three field– collected strains of the German cockroach Blattella germanica (L.) (Dictyoptera: Blattellidae) from hospitals in Kermanshah, Iran. Tropical Biomedicine 28: 111-118.
Mehrnejad, M. R. 2010. Potential biological control agents of the common pistachio psylla, Agonoscena pistaciae. Entomofauna 31: 317-340.
Mingjing, Q., Zhaojun, H., Xinjun, X. and Lina, Y. 2003. Triazophos resistance mechanisms in the rice stem borer (Chilo suppressalis Walker). Pesticide Biochemistry and Physiology 77: 99–105.
Morin, S., Williamson, M. S., Goodson, S. J., Brown, J. K., Tabashnik, B. E. and Dennehy, T. J. 2002. Mutations in the Bemisia tabaci para sodium channel gene associated with resistance to a pyrethroid plus organophosphate mixture. Insect Biochemistry and Molecular and Biology 32: 1781-1791.
Rahim, J., Ahmad, A. H., Kassim, N. F. A., Ahmad, H., Ishak, I. H., Rus, A. C. and Maimusa, H. A. 2016. Revised discriminating lethal doses for resistance monitoring program on Aedes albopictus against Temephos and Malathion in Penang Island, Malaysia. Journal of the American Mosquito Control Association 32: 210-216.
Saleem, M., Dilbar, H., Ghouse, G., Muneer, A. and Fisher, S. W. 2015. Monitoring of insecticide resistance in Spodoptera litura (Lepidoptera: Noctuidae) from four districts of Punjab, Pakistan to conventional and new chemistry insecticides. Crop Protection 23(3): 1-8.
Santo Orihuela, P. L., Vassena C. V., Zerba, E. N. and Picollo M. I. 2008. Relative contribution of monooxygenase and esterase to pyrethroid resistance in Triatoma infestans (Hemiptera: Reduviidae) from Argentina and Bolivia. Journal of Medical Entomology 45: 298-306.
Saur, G. 2005. Efficacy of kaolin particle film and selected synthetic insecticides against pistachio psyllid Agonoscena targionii (Homoptera: Psyllidae) infestation. Crop Protection 24(8): 711-717.
SAS Institute, 2002. SAS/GRAPH Software: Reference Volume 2 Version 8, Cary, NC: SAS Institute Inc.
Scott, J. G. 1995. The molecular genetics of resistance: resistance as a response to stress. Florida Entomology 78: 399- 414.
Tiwari, S. S., Mann, R. S., Rogers, M. E. and Stelinski, L. 2011. Insecticide resistance in field populations of Asian citrus psyllid in Florida. Pest Management Science 67: 1258–1268.
Van Asperen, K. 1962. A study of housefly esterases by means of a sensitive colorimetric method. Journal of Insect Physiology 8: 401-416.
Wang, K. Y., Liu, T. X., Yu, C. H., Jiang, X. Y. and Yi, M. Q. 2002. Resistance of Aphis gossypii (Homoptera: Aphididae) to fenvalerate and imidacloprid and activities of detoxification enzymes on cotton and cucumber. Journal of Economic Entomology 95: 407-413.
Wang, L., Zhang, Y., Han, Z., Liu, Y. and Fang, I. 2010. Cross-resistance and possible mechanisms of chlorpyrifos resistance in Laodelphax striatellus (Fallén). Pest Management Science 66(10): 1096.
Wu, K. Y., Liu, T. X., Yu, C. H., Jiang, X. Y. and Yi, M. Q. 2009. Purification and partial characterization of glutathione S-transferase from insecticide-resistant field populations of Liposcelis paeta Pearman (Psocoptera: Liposcelididae). Archives of Insect Biochemistry and Physiology 70(2): 136-50.
Yang, Z., Zhang, Y., Liu, X. and Wang, X. 2017. Two novel cytochrome P450 genes CYP6CS1 and CYP6CW1 from Nilaparvata lugens (Hemiptera: Delphacidae): cDNA cloning and induction by host resistant rice. Pesticide of Biochemical and Physiology 130:79–83.
Yuntao, F., Wu, Q., Wang, S., Chang, X., Xie, W., Xu, B., and Zhang, Y. 2010. Cross-resistance study and biochemical mechanisms of thiamethoxam resistance in B-biotype Bemisia tabaci (Hemiptera: Aleyrodidae). Pest Management Science 66 (3): 313-318.
Zhang, N., Liu, C. F., Yang, F., Dong, S. I. and Zao, H. 2012. Resistance Mechanisms to chlorpyrifos and F392W mutation frequencies in the acetylcholine esterase ace1 allele of field populations of the tobacco whitefly, Bemisia tabaci in China. Journal of Insect Science 12: 41-56.
Zhang, Y., Yang, Y., Sun, H. and Liu, Z. 2016 Metabolic imidacloprid resistance in the brown planthopper, Nilaparvata lugens, relies on multiple P450 enzymes. Insect Biochemistry and Molecular Biology 79: 50–56. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 884 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 809 |