تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 748 |
تعداد مقالات | 7,118 |
تعداد مشاهده مقاله | 10,267,619 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 6,907,888 |
تاثیر سرم جنین گاوی بر رشد سلولهای خونی لاروهایHelicoverpa armigera، Anagasta kuehniella و Arge ochropus در محیط کشت سلولی400 Ex-cell | ||
تحقیقات آفات گیاهی | ||
مقاله 2، دوره 9، شماره 3، آذر 1398، صفحه 1-13 اصل مقاله (1.01 M) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22124/iprj.2019.3769 | ||
نویسندگان | ||
بیتا والیزاده1؛ جلال جلالی سندی* 1؛ رسول صالحی2 | ||
1گروه گیاهپزشکی، دانشگاه گیلان، رشت، ایران | ||
2گروه ژنتیک و زیستشناسی ملکولی، دانشگاه علوم پزشکی اصفهان، ایران | ||
چکیده | ||
استفاده از ردههای سلولی حشرات برای تولید آفتکشهای زیستی، پروتئینهای نوترکیب یا تحویل ژن، در حال گسترش است. لذا تولید ردههای سلولی جدید به غنیتر کردن این فنآوری کمک میکند، بنابراین هدف از تحقیق حاضر، تهیه چندین کشت اولیه از سلولهای خونی لاروهای کرم غوزه پنبه Helicoverpa armigera (Hubner)، شبپره مدیترانهای آرد Anagasta kuehniella (Zeller) و زنبور برگخوار رز Arge ochropus (Gmelin) میباشد. سلولهای خونی در محیط کشت EX-cell 400 حاوی غلظتهای مختلف 0، 5، 10، 15 و 20 درصد سرم جنینی گاوی در دمای 28 درجه سلسیوس نگهداری شدند. غلظتهای سرم جنینی بر اساس پژوهشهای پیشین کشت سلولی حشرات انتخاب شدند. نتایج نشان داد که زمانی که سرم جنینی گاوی از محیط کشت حذف شد، هیچ رشد سلولی مشاهده نشد. بیشینه رشد سلولهای خونی لارو کرم غوزه در محیط کشت حاوی 15 درصد سرم جنینی گاوی مشاهده شد. با افزایش سرم جنینی گاوی به 20 درصد، افزایشی در رشد سلولی مشاهده نشد. بیشینه رشد سلولهای خونی لارو شبپره مدیترانهای آرد در محیط کشت با 10 درصد سرم جنینی گاوی مشاهده شد. رشد این سلولها در سرم جنینی گاوی 15 و 20 درصد بهطور معنیداری کاهش یافت. با افزایش غلظت سرم جنینی گاوی، رشد سلولهای خونی A. ochropus نیز افزایش یافت. در نتیجه، پژوهش حاضر، حداقل غلظت سرم جنینی گاوی مورد نیاز برای بیشینه رشد سلولهای حشرات را در محیط کشت سلولی نشان داد. | ||
کلیدواژهها | ||
زنبور برگخوار رز؛ شبپره مدیترانهای آرد؛ کرم غوزه پنبه؛ سرم جنینی گاوی؛ کشت سلولی حشرات | ||
مراجع | ||
Aghili, Z. and Zarkesh, H. 2016. Investigating the effects of fetal bovine serum on morphology, cell viability and production of recombinant human growth hormone in comparison to serum-free medium in CHO cells. New Cellular and Molecular Biotechnology Journal 6(24): 65-71. (In Farsi)
Arif, B. and Pavlik, L. 2012. Insect cell culture: Virus replication and applications in biotechnology. Journal of Invertebrate Pathology 112: 136-141.
Baghban, A., Jalali Sendi, J. and Zibaee, A. 2015. The effect of zinc (Zn2+) on cellular immune system of American cotton bollworm, Helicoverpa armigera Hübner (Lep.: Noctuidae). Plant Pest Research 5(3): 71-84. (In Farsi)
Chaeychomsri, S. Chaeychomsri W. Ikeda M. and Kobayashi M. 2017. Susceptibility of a Cloned Cell Line from Helicoverpa armigera to Homologous Nucleopolyhedrovirus. Journal of Advanced Agricultural Technologies 4: 3.
Davis, J. M. 1994. Basic cell culture A Practical Approach. Oxford University Press.
Drugmand, J. C., Schneider Y. J. and Agathos, S. N. 2012. Insect cells as factories for biomanufacturing. Biotechnology Advances 30: 1140–1157.
Evans, C. J., Liu, T. and Banerjee, U. 2014. Drosophila hematopoiesis: Markers and methods for molecular genetic analysis. Methods 68: 242-251.
Fan, J. 2016. Hemocytometer cell count and trypan blue cell viability (4th ed). Bowdish Lab, McMaster University Hamilton, ON, Canada.
Ferruzza, S., Rossi, C., Sambuy, Y. and Scarino, M. L. 2013. Serum reduced and serum free media for differentiation of Caco2 cells. Altext 30:159-168.
Ghasemi, V., Moharramipour, S. and Sendi, J. J. 2013. Circulating hemocytes of Mediterranean flour moth, Ephestia kuehniella Zell. (Lep.: Pyralidae) and their response to thermal stress. Invertebrate Survival Journal 10: 128-140.
Gómez, D. L. M., Belaich, M. N., Rodríguez, V. A. and Ghiringhelli, P. D. 2018. Effects of fetal bovine serum deprivation cultures on the production of Anticarsia gemmatalis multinucleopolyhedrovirus. Contributions on Biotechnology 10: 68.
Harrison, R. L., Herniou, E. A., Jehle, J. A., Theilmann, D. A., Burand, J. P., Becnel, J. J., Krell, P. J., van Oers, M. M., Mowery, J. D., Bauchan, G. R. and Lefkowitz, E. J. 2018. ICTV virus taxonomy profile: Baculoviridae. Journal of General Virology 99(9): 1185-1186.
He, F., Yang, Y., Xiao, Y., Peng, R., Yao, H., Li, X., Peng, J., Hong, H., Liu, K. and Li,J. 2015. Establishment and characterization of a novel cell line from midgut tissue of Helicoverpa armigera (Lepidoptera: Noctuidae). In Vitro Cellular and Developmental Biology - Animal 51(6): 562-571.
Khosravi, R., Sendi, J. J., Brayner, F. A., Alves, L. C. and Feitosa, A. P. S. 2015. Hemocytes of the Rose Sawfly Arge ochropus (Gmelin) (Hymenoptera: Argidae).Neotropical Entomology 45(1): 58-65.
Lemaitre, B. and Hoffmann, J. A. 2007. The host defense of Drosophila melanogaster. Annual Review of Immunology 25: 697-743.
Liu, C. H. and Chang, T. Y. 2006. Rational development of serum free medium for Chinese hamster ovary cells. Process Biochemistry 41: 2314–2319.
Lua, L. H. L., Pedrini, M. R. S., Reid, S., Robertson, A. and Tribe, D. E. 2002. Phenotypic and genotypic analysis of Helicoverpa armigera nucleopolyhedrovirus serially passaged in cell culture. Journal of General Virology 83: 945–955.
Lynn, D., Stephen, E. and Ferkovich, M. 2004. New cell lines from Ephestia kuehniella: characterization and susceptibility to baculoviruses. Journal of Insect Science 4(9): 1-5.
Mangalika, P. R., Kawamoto, T., Takahashi-Nakaquchi, A. and Iwabuchi, K. 2010. Characterization of cell clusters in larval hemolymph of the cabbage armyworm Mamestra brassicae and their role in maintenance of hemocyte populations. Journal of Insect Physiology 56(3): 314-323.
Matindoost, L., Jalali Sendi, J., Soleiman-Jahi, H., Etebari K. and Rahbarizade, F. 2008. In vitro establishment of embryonic primary cultures of silkworm, Bombyx mori (Lep.: Bombycidae). Journal of Entomological Society of Iran 38(2): 173-186. (In Farsi)
Maranga, L., Coroadinha, A. S. and Carrondo, M. J. T. 2002. Insect cell culture medium supplementation with fetal bovine serum and bovine serum albumin: Effects on Baculovirus adsorption and infection kinetics. Biotechnology Progress 18: 855−861.
Merten, O. W., Kierulff, J. V., Castignolles, N. and Perrin, P. 1994. Evaluation of the new serum free medium (MDSS2) for the production of different biological: use of various cell lines. Cytotechnology 14: 47-59.
Merten, O. W., Kallel, H. and Manuguerra, J. C. 1999. The new medium MDSS2N, free of any animal protein supports cell growth and production of various viruses. Cytotechnology 30: 191-201.
Mitsuhashi, J. 2002. Invertebrate tissue culture methods. Springer-Verlag, Tokyo, p. 446.
Mitsuhashi, J. and Shozawa, A. 1985. Continuous cell lines from larval hemocytes of the cabbage armyworm, Mamestra brassicae. Development, Growth and Differentiation 27(5): 599-606.
Pedrini, M. R. S., Reid, S., Nielsen, L. and Chan, L. C. L. 2011. Kinetic characterization of the group II Helicoverpa armigera nucleopolyhedrovirus propagated in suspension cell cultures: implications for development of a biopesticides production process. Biotechnological Progress 27: 614–624.
Ranga Rao, C., Kumar, S., Sireesha, K. and Lava, P. 2015. Role of nucleopolyhedroviruses (NPVs) in the management of lepidopteran pests. In Asia G. V. (Eds). International Publishing Switzerland, Switzerland, Europe. pp. 43.
Reid, S., Chan, L. C. L. and Van Oers, M. M. 2014. Production of entomopathoginic viruses. In: Morales-Ramos, J. A., Rojas, M. G. and Shapiro-Ilan D. I. (Eds.). Mass production of beneficial organisms invertebrates and entomopathogens. Elsevier, Amsterdam, Netherland, Europe. ISBN 978-0-12-391453-8.
Rezaei, M., Zarkesh Esfahani, S. H. and Gharagozloo, M. 2013. The effect of different media composition and temperatures on the production of recombinant human growth hormone by CHO cells. Research in Pharmaceutical Sciences 8: 211-217.
Shorey, H. and Hale, R. 1965. Mass-rearing of the larvae of nine noctuid species on a simple artificial medium. Journal of Economic Entomology 58: 522–524.
Sohi, S. S. and Smith, C. 1970. Effect of fetal bovine serum on the growth and survival of insect cell cultures. Canadian Journal of Zoology 48: 427-432.
Stanley, D. and Kim, Y. 2014. Eicosanoid signaling in insects: from discovery to plant protection. Critical Reviews in Plant Sciences 33: 1. 342-349.
Van der Valk, J., Brunner, D., De Smet, K., Fex Svenningsen, A., Honegger, P., Knudsen, L. E., Lindl, T., Noraberg, J., Price, A., Scarino, M. L. and Gstraunthaler, G. 2010. Optimization of chemically defined cell culture media replacing fetal bovine serum in mammalian in vitro methods. Toxicology in Vitro 24:1053-1063.
Wagner, G. R. and Hirschey, M. D. 2014. Nonenzymatic protein acylation as a carbon stress regulated by sirtuin deacylases. Molecola Cell 54(1): 5-16.
Wen, F., Caputo, G. and Hooey, S. h. 2015. Establishment of a cell line from the ash and privet borer beetle Tylonotus bimaculatus Haldeman and assessment of its sensitivity to diacylhydrazine insecticides. In Vitro Cellular and Developmental Biology Animal 42: 683–707.
Yasunaga-Aoki, G., Imanishi, S., Iiyama K. and Kawarabata, T. 2004. Establishment of phagocytic cell lines from larval hemocytes of the beet armyworm, Spodoptera exigua. In Vitro Cellular and Developmental Biology- Animal 40: 183-186.
Yazdanian, M. 2000. Evaluating the amount of growth and fecundity of mill moth, Ephestia kuehniella Zeller on different media prepared from flour. M. Sc. Thesis, University of Tabriz, 125 pp. (In Farsi)
Yoon, S. K. and Hong, J. K. 2006. Adaptation of Chinese hamster ovary cells to low culture temperature: cell growth and recombinant protein production. Journal of Biotechnology 122: 463-472.
Yuanyuan, M., Wu, W., Chen, H., Liu, Q., Jia, D., Mao, Q., Chen, Q., Wu, Z. and Taiyun, W. 2013. An insect cell line derived from the small brown plant hopper supports replication of rice stripe virus, a tenuivirus. Journal of General Virology 94: 1421–1425. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 692 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 551 |