تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 748 |
تعداد مقالات | 7,108 |
تعداد مشاهده مقاله | 10,241,084 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 6,898,547 |
موقعیتیابی ایمونوهیستوشیمیایی گرلین در غدد ضمیمه جنسی گاو نر | ||
تحقیقات تولیدات دامی | ||
مقاله 8، دوره 7، شماره 4، اسفند 1397، صفحه 79-88 اصل مقاله (1.32 M) | ||
نوع مقاله: مقاله کوتاه | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22124/ar.2019.10142.1302 | ||
نویسندگان | ||
محمد رحمی1؛ برهان شکراللهی* 2؛ علی اکبر امیری3 | ||
1فارغ التحصیل کارشناسی ارشد فیزیولوژی دام، گروه علوم دامی دانشکده کشاورزی دانشگاه آزاد اسلامی واحد سنندج | ||
2دانشیار گروه علوم دامی دانشکده کشاورزی دانشگاه آزاد اسلامی واحد سنندج | ||
3مربی گروه علوم پایه دانشکده دامپزشکی دانشگاه آزاد اسلامی واحد سنندج | ||
چکیده | ||
گرلین هورمون پپتیدی 28 اسید آمینهای است که در معده و اکثر بافتهای محیطی بیان میشود. با توجه به عدم انجام تحقیقی در خصوص وجود گرلین در غدد جنسی حیوانات، در این تحقیق موقعیتیابی گرلین در بافت غدد پروستات، وزیکول سمینال و آمپولای گاو هلشتاین به وسیله تکنیک ایمونوهیستوشیمی بررسی شد. از آنتیبادی مونوکلونال موشی ضد گرلین به عنوان آنتیبادی اولیه و آنتیبادی پلیکلونال الاغی ضد ایمنوگلوبین G هورس رادیش پروکسیداز به عنوان آنتیبادی ثانویه استفاده شد. نمونههای بافتی غدد ضمیمه جنسی از پنج گاو هلشتاین بالغ دو ساله جمعآوری شد و برای آزمایش ایمونوهیستوشیمی در فرمالین 10% نگهداری شدند. سپس بلوکهای پارافینی و مقاطع بافتی تهیه شدند. نتایج نشان داد که واکنش ایمونوهیستوشیمی در سیتوپلاسم سلولهای ترشحی غده پروستات، وزیکول سمینال و آمپولا مثبت بود، اما شدت رنگپذیری در غده پروستات نسبت به دیگر غدد خیلی ضعیف بود. بر اساس نتایج این تحقیق بیان گرلین در برخی غدد ضمیمه جنسی گاو نر میتواند نشاندهنده نقش احتمالی این هورمون در پارامترهای باروری اسپرم و اثر آن بر فرآیند لقاح باشد. | ||
کلیدواژهها | ||
آمپولا؛ پروستات؛ گاو نر هلشتاین؛ گرلین؛ وزیکول سمینال | ||
مراجع | ||
صادق وزیری س.، شکراللهی ب. و محمدی ص. 1396. موقعیتیابی گرلین در اپیدیدیم و بیضه قوچ. نشریه دامپزشکی (پژوهش و سازندگی)، 114: 81-75. منصوری ک. و شکراللهی ب. 1396. موقعیتیابی ایمنوهیستوشیمیایی گرلین در بافت بیضه بز. نشریه دامپزشکی (پژوهش و سازندگی)، 115: 193-185. Arvat E., Maccario M., Di Vito L., Broglio F., Benso A., Gottero C., Papotti M., Muccioli G., Dieguez C. and Casanueva F. F. 2001. Endocrine activities of ghrelin, a natural growth hormone secretagogue (GHS), in humans: comparison and interactions with hexarelin, a nonnatural peptidyl GHS, and GH-releasing hormone 1. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism, 86: 1169-1174.
Barreiro M. L. and Tena-Sempere M. 2004. Ghrelin and reproduction: a novel signal linking energy status and fertility? Molecular and Cellular Endocrinology, 226: 1–9.
Bayezidi-Azar A. and Shokrollahi B. 2016. Immunohistochemical localization of Ghrelin in testicular tissues of Holstein bulls. Iranian Journal of Applied Animal Science, 6(3): 551-555.
Broglio F., Benso A., Castiglioni C., Gottero C., Prodam F., Destefanis S., Gauna C., van der Lely A. J., Deghenghi R. and Bo M. 2003. The endocrine response to ghrelin as a function of gender in humans in young and elderly subjects. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism, 88: 1537-1542.
Castaneda T., Tong J., Datta R., Culler M. and Tschöp M. 2010. Ghrelin in the regulation of body weight and metabolism. Frontiers in Neuroendocrinology, 31: 44-60.
Chen H., Cheung M. P., Chow P. H., Cheung A. L., Liu W., O W. S. 2002. Protection of sperm DNA against oxidative stress in vivo by accessory sex gland secretions in male hamsters. Reproduction, 124: 491-499.
Chow P., Jiang H., Poon H. and Lee K. 2003. Embryos sired by males without accessory sex glands induce failure of uterine support: a study of VEGF, MMP and TGF expression in the golden hamster. Anatomy and Embryology, 206: 203-213.
Curi S. M., Ariagno J. I., Chenlo P. H., Mendeluk G. R., Pugliese M. N., Sardi Segovia L. M., Repetto H. E. and Blanco A. M. 2003. Asthenozoospermia: analysis of a large population. Archives of Andrology, 49: 343-349.
Dacheux J. L., Belleannee C., Guyonnet B., Labas V., Teixeira-Gomes A. P., Ecroyd H., Druart X., Gatti J. L. and Dacheux F. 2012. The contribution of proteomics to understanding epididymal maturation of mammalian spermatozoa. Systems Biology in Reproductive Medicine, 58:197–210.
Dupont J., Maillard V., Coyral-Castel S., Rame C. and Froment P. 2010. Ghrelin in female and male reproduction. International Journal of Peptides, 2010: 1-8.
Felix A. M. 2010. Circulating ghrelin concentrations during the transition period of dairy cattle and the associated relationship with milk production. MSc Thesis, The university of Arizona.
Gaytan F., Barreiro M. L., Caminos J. E., Chopin L. K., Herington A. C., Morales C., Pinilla L., Paniagua R., Nistal M. and Casanueva F. 2004. Expression of ghrelin and its functional receptor, the type 1a growth hormone secretagogue receptor, in normal human testis and testicular tumors. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism, 89: 400-409.
Ghigo E., Broglio F., Arvat E., Maccario M., Papotti M. and Muccioli G. 2005. Ghrelin: more than a natural GH secretagogue and/or an orexigenic factor. Clinical Endocrinology, 62: 1-17.
Henault M., Killian G., Kavanaugh J. and Griel L. 1995. Effect of accessory sex gland fluid from bulls of differing fertilities on the ability of cauda epididymal sperm to penetrate zona-free bovine oocytes. Biology of Reproduction, 52: 390-397.
Iqbal J., Kurose Y., Canny B. and Clarke I. J. 2006. Effects of central infusion of ghrelin on food intake and plasma levels of growth hormone, luteinizing hormone, prolactin, and cortisol secretion in sheep. Endocrinology, 147: 510-519.
Kandasamy S., Jain A., Baviskar P., Kumar R., Joshi P., Agarwal S. K. and Mitra A. 2013. Molecular characterization and expression profile of ghrelin gene during different reproductive phases in buffalo (Bubalus bubalis). Domestic Animal Endocrinology, 45: 55-63.
Kheradmand A., Dezfoulian O., Alirezaei M. and Rasoulian B. 2012. Ghrelin modulates testicular germ cells apoptosis and proliferation in adult normal rats. Biochemical and Biophysical Research Communications, 419: 299-304.
Kojima M., Hosoda H., Date Y., Nakazato M., Matsuo H. and Kangawa K. 1999. Ghrelin is a growth-hormone-releasing acylated peptide from stomach. Nature, 402: 656-660.
Korbonits M., Goldstone A. P., Gueorguiev M. and Grossman A. B. 2004. Ghrelin—a hormone with multiple functions. Frontiers in Neuroendocrinology, 25: 27-68.
Lorenzi T., Meli R., Marzioni D., Morroni M., Baragli A., Castellucci M., Gualillo O. and Muccioli G. 2009. Ghrelin: a metabolic signal affecting the reproductive system. Cytokine and Growth Factor Reviews, 20: 137-152.
Łukaszyk A., Rafińska L., Sawiński P., Kasprzak A., Olejniczak K., Ruciński M., Ruchała M. and Sowiński J. 2009. Immunohistochemical and hybridocytochemical study on ghrelin signalling in the rat seminiferous epithelium. Folia Histochemica et Cytobiologica, 47: 415-423.
Manjunath P. and Therien I. 2002. Role of seminal plasma phospholipid-binding proteins in sperm membrane lipid modification that occurs during capacitation. Journal of Reproductive Immunology, 53: 109-119.
Miller D. W., Harrison J. L., Brown Y. A., Doyle U., Lindsay A., Adam C. L. and Lea R. G. 2005. Immunohistochemical evidence for an endocrine/paracrine role for ghrelin in the reproductive tissues of sheep. Reproductive Biology and Endocrinology, 3: 60-71.
Moretti E., Collodel G., Iacoponi F., Geminiani M., Pascarelli N. A., Campagna S., Franci B. and Figura N. 2011. Detection of obestatin in seminal plasma and its relationship with ghrelin and semen parameters. Fertility and Sterility, 95: 2303-2309.
Moretti E., Vindigni C., Tripodi S. A., Mazzi L., Nuti R., Figura N. and Collodel G. 2014. Immunolocalisation of ghrelin and obestatin in human testis, seminal vesicles, prostate and spermatozoa. Andrologia, 46: 979-985.
Taati M., Moghadasi M., Dezfoulian O., Asadian P., Kheradmand A., Abbasi M. and Zendehdel M. 2012. The effect of ghrelin pretreatment on epididymal sperm quality and tissue antioxidant enzyme activities after testicular ischemia/reperfusion in rats. Journal of Physiology and Biochemistry, 68: 91-97.
Vulliémoz N. R., Xiao E., Xia-Zhang L., Rivier J. and Ferin M. 2008. Astressin B, a nonselective corticotropin-releasing hormone receptor antagonist, prevents the inhibitory effect of ghrelin on luteinizing hormone pulse frequency in the ovariectomized rhesus monkey. Endocrinology, 149: 869-874.
Yuan Y. Y., Chen W. Y., Shi Q. X., Mao L. Z., Yu S. Q., Fang X. and Roldan E. R. 2003. Zona pellucida induces activation of phospholipase A2 during acrosomal exocytosis in guinea pig spermatozoa. Biology of Reproduction, 68: 904-913. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,059 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 613 |