تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 748 |
تعداد مقالات | 7,112 |
تعداد مشاهده مقاله | 10,245,905 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 6,899,615 |
اثر افزودن زرده تخم مرغ به رقیق کننده شیر پس چرخ و شوک سرما بر ذخیره سازی اسپرم پوشش دارشده قوچ تالشی به صورت مایع در سرما | ||
تحقیقات تولیدات دامی | ||
مقاله 9، دوره 3، شماره 4، اسفند 1393، صفحه 99-108 اصل مقاله (232.24 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
نویسندگان | ||
آزاده محمدی1؛ محمد روستایی علی مهر* 2 | ||
1دانشجوی کارشناسی ارشد فیزیولوژی دام دانشکده علوم کشاورزی دانشگاه گیلان | ||
2دانشیار گروه علوم دامی دانشکده علوم کشاورزی دانشگاه گیلان | ||
چکیده | ||
این آزمایش به منظور تعیین اثر زرده تخم مرغ و شوک سرما بر اسپرم پوششدارشده، با استفاده از آزمون فاکتوریل 2×5 با 10 تیمار و 5 تکرار در قالب طرح کاملاً تصادفی بهصورت اندازهگیریهای تکرارشده در زمان انجام شد. منی از سه راس قوچ در پنچ نوبت با استفاده از واژن مصنوعی متصل به لوله حاوی تریس- فروکتوز- 15% زرده تخممرغ جمعآوری شد. نمونهها تجمیع، سانتریفیوژ و مایع رویی حذف شد. رسوب به دو گروه و هر گروه به پنج زیر گروه مساوی تقسیم شد و بعد به هر قسمت صفر، 5، 10، 15 و 20% زرده تخممرغ اضافه شد. نمونه های گروه اول به سرعت (شوک سرما) و نمونههای گروه دوم بهتدریج تا 5 سانتیگراد سرد شدند و بعد برای 72 ساعت ذخیره شدند. تحرک پیشرونده اسپرم، سلامت غشا پلاسمایی، زندهمانی (هوخست بیس بنزامید33258) و واکنش آکروزومی (آلکسافلور-488) در ساعت صفر، 24، 48 و 72 بررسی شد. زندهمانی اسپرم طی شوک سرما و سردکردن تدریجی در غلظت 5% زرده تخم مرغ (به ترتیب 47/1±60/67، 47/1±30/77) نسبت به صفر درصد (به ترتیب 47/1±750/59، 47/1±20/71) بیشتر بود. تحرک پیشرونده اسپرم، سلامت غشا پلاسمایی و آکروزومی اسپرم در حضور زرده تخم مرغ بهبود یافت، اما در تیمارهای حاوی زرده تخممرغ تفاوت نداشت. بنابراین جهت ذخیرهسازی اسپرم پوششدارشده قوچ در رقیقکننده شیر پسچرخ و دما °C5 استفاده از 5% زرده تخم مرغ پیشنهاد میشود. | ||
کلیدواژهها | ||
رقیق کننده شیر پس چرخ؛ زرده تخم مرغ؛ شوک سرما؛ قوچ تالشی؛ پوشش دارکردن | ||
مراجع | ||
Aboagla E. M. E. and Terada T. 2004. Effects of egg yolk during the freezing step of cryopreservation on the viability of goat spermatozoa. Theriogenology, 62: 1160–1172.
Bergeron A., Brindle Y., Blondin P. and Manjunath P. 2007. Milk caseins decrease the binding of the major bovine seminal plasma proteins to sperm and prevent lipid loss from the sperm membrane during sperm storage. Biology of Reproduction, 77: 120–126.
Bergeron A., Crete, M. H., Brindle Y. and Manjunath P. 2004. Low-density lipoprotein fraction from hen’s egg yolk decreases the binding of the major proteins of bovine seminal plasma to sperm and prevents lipid efflux from the sperm membrane. Biology Reproduction, 70: 708–717.
Bergeron A. and Manjunath P. 2006. New insights towards understanding the mechanisms of sperm protection by egg yolk and milk. Molcular Reproduction and Development, 73: 1338–1344.
Braun J., Hochi S., Oguri N., Sato K. and Torres-Boggino F. 1995. Effect of different protein soplements on motility and plasma membrane integrity of frozen-thawed stallion spermatozoa. Cryobiology, 32: 487-492.
Bucak M. N., Sariozkan S., Tuncer P. B., Ulutas P. A. and Akcadag H. I. 2009. Effect of antioxidants on microscopic semen parameters, lipid peroxidation, and antioxidant activities in angora goat semen following cryopreservation. Small Ruminant Research, 81: 90-95.
Darin-Bennett A. and White I. G. 1977. Influence of the cholesterol content of mammalian spermatozoa on susceptibility to cold-shock. Cryobiology, 14: 466-470.
De Leeuw A. M., Den Daas G. H. E. and Woelders H. 1991. The fix vital stain method simultaneous determination of viability and acrosomal and status of bovine spermatozoa. Journal of Andrology, 12: 112-118.DE
De pauw I. M. C., Van soom A., Maes D., Verberckmoes S. and De Kruif A. 2003. Effect of sperm coating on the survival and penetrating ability of invitro stored bovine spermatozoa. Theriogenology, 59: 1109- 1122.
Drobins E. Z., Crowe L. M., Berger T., Anchordoguy T. J., Overstreet J. W. and Crowe J. H. 1993. Cold shock damage is due to lipid phase transitions in cell membranes: A demonstration using sperm as a model. Journal of experimental zoology, 265: 432-437.
El Bagir N. M., Hama A. Y., Hamed R. M., Abd El Rahim A. G. and Beynen A. C. 2006. Lipid composition of egg yolk and serum in laying hens fed diets containing black cumin (Nigella sativa). International Journal of Poultry Science, 5: 574–578.
Farrell H. M., Jimenez-Flores R., Bleck G. T., Brown E. M., Butler J. E., Creamer L. K., Hicks C. L., Hollar C. M., Ng-Kwai-Hang K. F. and Swaisgood H. E. 2004. Nomenclature of the proteins of cows' milk sixth revision. Journal of Dairy Science, 87: 1641-1674.
Garcia-Artiga C. 1994. Test de endósmosis en ovino. In: 7th International Meeting on Animal Reproduction, Murcia, Spain, 77-81.
Gill J., Fierro S., Bentancur O. and Olivera-Muzante J. 2011. Chilled Storage of Ram Semen Improves with the Addition of Egg Yolk and Glycerol to Milk-Based Extenders. Reproduction in Domestic Animals, 46: 503–507.
Gill J., Lundeheim N., Soderquist L. and Rodriguez-Martinez H. 2003. Influence of extender, temperature, and addition of glycerol on post-thaw sperm parameters in ram semen. Theriogenology, 59: 1241–1255.
Jasko D. J., Hathaway J. A., Schaltenbrand V. L., Simper W. D. and Squires E. L. 1992. Effect of seminal plasma and egg yolk on motion characteristics of cooled stalion spermatozoa. Theriogenology, 37: 1241-1252.
Jeyendran R. S., Van-der-Ven H. H. and Zaneveld L. J. 1992. The hypoosmotic swelling test: an update. Archives of Andrology, 29: 105-116.
Jiménez-Rabadna P., Ramna M., Garca-lvarezb O., Maroto-Moralesb A., del Olmob E., Pérez-Guzmna M. D., Bisbalb A., Fernndez-Santosb M. R., Gardeb J. J. and Solerb A. J. 2012. Effect of semen collection method (artificial vagina vs. electroejaculation), extender and centrifugation on post-thaw sperm quality of Blanca-Celtibérica buck ejaculates. Animal Reproduction Science, 132: 88– 95.
Kulaksiz R., cebi C. and akcay E. 2012. The effect of different extenders on the motility andmorphology of ram sperm frozen or stored at 4 °C. Turkish Journal of Veterinary and Animal Science, 36: 177-182.
Leboeuf B., Guillouet P. H., Batellier F., Bernelas D., Bonne J. L., Forgerit Y., Renaud G. and Magistrini M. 2003. Effect of native phosphocaseinate on the in vitro preservation of fresh semen, Theriogenology, 60: 867–877.
Lusignan M. F., Bergeron A., Lafleur M. and Manjunath P. 2011. The major proteins of bovine seminal plasma interact with caseins and whey proteins of milk extender. Biology of Reproduction, 85: 457-464.
Manjunath P. 2012. New insights into the understanding of the mechanism of sperm protection byextender components. Animal Reproduction, 9: 809-815.
Manjunath P., Sairam M. R. and Uma J. 1987. Purification of four gelatinbinding proteins from bovine seminal plasma by affinity chromatography. Bioscience Reports, 7: 231–238.
Manjunath P. and Thérien I. 2002. Role of seminal plasma phospholipidbinding proteins in sperm membrane lipid modification that occurs during capacitation. Journal of Reproductive Immunology, 53: 109–119.
Marti J. I., Martı E., Cebrián-Pérez J. A. and Muiño-Blanco T. 2003. Survival rate and antioxidant enzyme activity of ram spermatozoa after dilution with different extenders or selection by a dextran swim-up procedure. Theriogenology, 60: 1025–1037.
Maxwell W. and Salamon S. 1993. Liquid storage of ram semen: a review. Reproduction Fertility and Development, 5: 613–638.
Maxwell W. M. C. and Stojanov T. 1996. Liquid Storage of Ram Semen in the Absence or Presence of Some Antioxidants. Reproduction Fertility Development, 8: 1013-1020.
Moore A. I., Squires E. L. and Graham J. K. 2005. Adding cholesterol to the stallion sperm plasma membrane improves cryosurvival. Cryobiology, 51: 241–249.
Olde-Clark P. and Sego R. 1992. Calcium alters capacitation and progressive motility of uterine sperm from +/+ and tw/32/+ mice. Biology of Reproduction, 47: 629-635.
Ortman K. and rodriguez-Martinez H. 1994. Membrane damage during dilution, cooling and freezig-thawing of boar spermatozoa packaged in plastic bags. Journal of Veterinary Medicine Series A, 41: 37-47.
Pagl R., Aurich J. E., Muller-Schlosser F., Kankofer M. and Aurich C. 2006. Comparison of an extender containing defined milk protein fractions with a skim milk- based extender for storage of equine semen at 5 ºC. Theriogenology, 66: 1115–1122.
Pummer A. C., Linfor J. J. and Meyers S. A. 2002. Capacitation and acrosomal exocytosis are enhanced by incubation of stallion spermatozoa in commercial semen extenders. Theriogenology, 57: 1493-1501.
Salamon S and Maxwell W. M. C. 2000. Storage of ram semen. Animal Reproduction Science, 62: 77–111.
Santiani A., Huanca W., Sapana R., Huanca T., Sepúlveda N. and Sánchez R. 2005. Effects on the quality of frozen-thawed alpaca (Lama pacos) semen using two different cryoprotectants and extenders .Asian Journal of Andrology, 7: 303–309.
Stellflug, J. N., Cockett N. E. and Lewis G. S. 2008. The influence of breeding intensity on above- and belown average sexual performance rams in single- and multiple-sire breeding environments. Animal Reproduction Science, 104: 248-256.
Trimeche A., Anton A. M., Renard P., Gandemer G. and Tainturie D. 1996. Quail egg yolk: a novel cryoprotectant for the freeze preservation of Poitou jackass sperm. Cryobiology, 34: 385–393.
Varisly O., Uguz C., Agca C. and Agca Y. 2009. Motility and acrosomal integrity comparision between electroejaculated and epididimal ram sperm after exposure to a range of anisosmotic solutions, cryoprotective agents and low temperatures. Animal Reproduction Science, 110: 256-268.
White I. G. 1993. Lipids and calcium uptake of sperm in relation to cold shock and preservation: a review. Reproduction Fertility Development, 5: 639-658.
Witte T. S. and Schäfer-Somi S. 2007. Involvement of cholesterol, calcium and progesterone in the induction of capacitation and acrosome reaction of mammalian spermatozoa. Animal Reproduction Science, 102: 181–193.
Witte T. S., Schäfer-Somi S., Kuchar A., Mostl E., Iben C. and Aurich C. 2009. Effect of hen’s egg yolk on capacitation and acrosome reaction of diluted canine spermatozoa. Animal Reproduction Science, 110: 293–305.
Zhao Y. and Buhr M. M. 1995. Cryopreservation extenders affect calcium flux in bovine spermatozoa during temperature challenge. Journal of Andrology, 16: 278-285. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 2,451 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,274 |