تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 743 |
تعداد مقالات | 7,072 |
تعداد مشاهده مقاله | 10,134,473 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 6,851,894 |
امکانسنجی تولید بلاستوسپورهای قارچ بیمارگر Beauveria bassiana روی محیطهای کشت مایع و ارزیابی میزان زهرآگینی آن نسبت به کنه تارتن دولکهای Tetranychus urticae در شرایط آزمایشگاهی | ||
تحقیقات آفات گیاهی | ||
دوره 14، شماره 1، خرداد 1403، صفحه 87-98 اصل مقاله (1.41 M) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22124/iprj.2024.27403.1574 | ||
نویسندگان | ||
الهه حمزه ای1؛ امین صدارتیان جهرمی2؛ کتایون خردمند* 1 | ||
1گروه حشرهشناسی و بیماریهای گیاهی، دانشکده فناوری کشاورزی ابوریحان، دانشگاه تهران، تهران، ایران | ||
2گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه یاسوج، یاسوج، ایران | ||
چکیده | ||
در پژوهش حاضر، تأثیر استفاده از مکملهای غذایی مختلف بر میزان تولید بلاستوسپور قارچ بیمارگر Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. (جدایه IRAN 1395C) مورد بررسی قرار گرفت. در مرحله نخست، تأثیر عصاره فرآوردههای کشاورزی مختلف مانند سبوس برنج، سبوس گندم، سبوس جو، سبوس ذرت و ضایعات سیبزمینی بر میزان تولید بلاستوسپور مورد بررسی قرار گرفت. یافتههای بهدست آمده نشان داد که محیط حاوی عصاره سبوس برنج بهترین شرایط را برای اسپورزایی فراهم نمود. سپس، مکملهای پروتئینی مختلف مانند پودر آب پنیر، سویا و پودر سفیده تخم مرغ با غلظت ۴ درصد به محیط کشت تهیهشده از عصاره سبوس برنج اضافه شده و تأثیر آنها بر میزان تولید بلاستوسپور ارزیابی شد. استفاده از این مکملها تأثیر مثبتی در افزایش میزان تولید بلاستوسپور نداشتند. در مرحله پایانی، تأثیر افزودن نمکهای کلرید مختلف (KCl، MgCl2 و CaCl2) به محیط کشت منتخب بر افزایش میزان تولید بلاستوسپور مورد مطالعه قرار گرفت. نتایج به دست آمده نشان داد که استفاده از کلرید کلسیم (CaCl2) در مقایسه با سایر نمکهای مورد مطالعه اثربخشی بیشتری در افزایش میزان تولید بلاستوسپور داشته است. سرانجام، زهرآگینی بلاستوسپورهای به دست آمده در محیط مایع و کنیدیومهای برداشتشده از محیط کشت جامد نسبت به کنه تارتن دولکهای Tetranychus urticae Koch مورد مقایسه قرار گرفت. نتایج حاصل از آزمون زیستسنجی نشان داد که قدرت زهرآگینی بلاستوسپورهای به دست آمده در محیط مایع (LC50 = 3.29 × 106 Blastospore/ml) اختلاف معنیداری با کنیدیومهای تولید شده در محیط جامد (LC50 = 3.23 × 106 Conidium/ml) ندارد. یافتههای حاضر حاکی از آن است که محیطهای کشت مایع میتوانند در توسعه برنامههای تولید انبوه قارچ بیمارگر B. bassiana مورد استفاده قرار گیرند. | ||
کلیدواژهها | ||
بلاستوسپور؛ زهرآگینی؛ قارچهای بیمارگر؛ کنترل بیولوژیک؛ محیط کشت طبیعی | ||
مراجع | ||
Agudelo, F., & Falcon, L. A. (1983). Mass production, infectivity, and field application studies with the entomogenous fungus Paecilomyces farinosus. Journal of Invertebrate Pathology, 42, 124-132. DOI: https://doi.org/10.1016/0022-2011(83)90210-0
Balakrishnan, S., Srikanth, J., Santhalakshmi, G., Hari, K., & Sankaranarayanan, C. (2011). Response of the entomopathogenic fungi Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae to molasses media fortified with supplements. Journal of Sugarcane Research, 1(2), 57-65.
Bigham, Z., & Talaei-Hassanloui, R. (2017). Production of two entomopathogenic fungi Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae on natural substrates using diphasic production method. Biological Control of Pests and Plant Diseases, 6(1), 103-109 (In Farsi). DOI: https://doi.org/ 10.22059/JBIOC.2017.202734.137Charnley, A. K. (2003). Fungal pathogens of insects: cuticle degrading enzymes and toxins. Advances in Botanical Research, 40, 241-321. DOI: https://doi.org/10.1016/S0065-2296(05)40006-3
Dorta, B., Bosch, A., Arcas J. A., & Ertola. R. J. (1990). High level of sporulation of Metarhizium anisopliae in a medium containing by-products. Applied Microbiology and Biotechnology, 33, 712-715. DOI: https://doi.org/10.1007/BF00604944
Frazzon, A. P. G., Junior, I. D. S. V., Masuda, A., Schrank, A., & Vainstein, M. H. (2000). In vitro assessment of Metarhizium anisopliae isolates to control the cattle tick Boophilus microplus. Veterinary Parasitology, 94(1-2), 117-125. DOI: https://doi.org/10.1016/s0304-4017(00)00368-x
Goettel, M. S., Johnson, D. L., & Inglis, G. D. (1995). The role of fungi in the control of grasshoppers. Canadian Journal of Botany, 73(S1), 71-75. DOI: https://doi.org/10.1139/b95-227.
Gouli, V., Provost, C., Gouli, S., Parker, B. L., & Skinner, M. (2013). Productivity of different species of entomopathogenic fungi based on one type of technology. Journal of Agricultural Technology, 9 (3): 571-580.
Inglis, G. D., Goettel, M. S., Butt, T. M., & Strasser, H. (2001). Use of hyphomycetous fungi for managing insect pests. In Butt, T. M., Jackson, C. W. and Magan, N. (Eds.). Fungi as Biocontrol Agents. CABI International, United Kingdom, pp. 23-70. DOI: https://doi.org/10.1079/ 9780851993560.0023
Kamp, A. M., & Bidochka, M. J. (2002). Conidium production by insect pathogenic fungi on commercially available agars. Letters in Applied Microbiology, 35(1), 74-77. DOI: https://doi.org/ 10.1046/j.1472-765x.2002.01128.x
Kassa, A., Brownbridge, M., Parker, B.L., Skinner, M., Gouli, V., Gouli, S., Guo, M., Lee, F. & Hata, T. (2008). Whey for mass production of Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae. Mycological Research, 112(5), 583-591. DOI: https://doi.org/10.1016/j.mycres. 2007. 12.004
Kim, J. J., & Kim, K. C. (2008). Selection of a highly virulent isolate of Lecanicillium attenuatum against cotton aphid. Journal of Asia-Pacific Entomology, 11(1), 1-4. DOI: https://doi.org/ 10.1016/j.aspen.2008.02.001
Lacey, L. A., Kirk, A. A., Millar, L., Mercadier, G.m & Vidal, C. (1999). Ovicidal and larvicidal activity of conidia and blastospores of Paecilomyces fumosoroseus (Deuteromycotina: hyphomycetes) against Bemisia argentifolii (Homoptera: Aleyrodidae) with a description of a bioassay system allowing prolonged survival of control insects. Journal of Biocontrol Science and Technology, 9, 9-18. DOI: https://doi.org/10.1080/09583159929866
Luczynski, A., Islam, M. B., Raworth, D. A., & Chan, C. K. (1990). Chemical and morphological factors of resistance against the two-spotted spider mite in beach strawberry. Journal of Economic Entomology, 83(2): 564-569. DOI: https://doi.org/10.1093/jee/83.2.564
Mar, T. T., & Lumyong, S. (2012). Conidial production of entomopathogenic fungi in solid-state fermentation. Asia-Pacific Journal of Science and Technology, 17(5), 762-768.
Ottati-de-Lima, E. L., Batista Filho, A., Almeida, J. E., Gassen, M. H., Wenzel, I. M., Almeida, A. M., & Zapellini, L. O. (2014). Liquid production of entomopathogenic fungi and ultraviolet radiation and temperature effects on produced propagules. Journal of Arquivos do Instituto Biológico, São Paulo, 81(4), 342- 350. DOI: https://doi.org/10.1590/1808-1657001352012
Prakash, G. B., Padmaja, V., & Kiran, R. S. (2008). Statistical optimization of process variables for the large-scale production of Metarhizium anisopliae conidiospores in solid-state fermentation. Bioresource Technology, 99(6), 1530-1537. DOI: https://doi.org/10.1016/ j.biortech.2007.04.031
Prasad, C. S., & Pal, R. (2014). Mass production and economics of entomopathogenic fungus, Beauveria bassiana, Metarhizium anisopliae and Verticillium lecanii on agricultural and industrial waste. Scholars Journal of Agriculture and Veterinary Sciences, 1(1), 28-32. DOI: https://doi.org/10.36347/sjavs.2014.v01i01.005
Rangel, D. E. N., Acheampong, M. A., Bignayan, H. G., Golez, H. G., & Roberts, D. W. (2023). Conidial mass production of entomopathogenic fungi and tolerance of their mass-produced conidia to UV-B radiation and heat. Fungal Biology, 127(12), 1524-1533. DOI: https://doi.org/10.1016/ j.funbio.2023.07.001Rashid, M., Talaei-Hassanloui, R., Khodaiyan, F., & Goettel, M. (2019). Potential use of some liquid natural media for the production of blastospores of entomopathogenic fungi Metarhizium anisopliae and Beauveria bassiana. Iranian Journal of Biosystems Engineering, 50(2): 489-497 (In Farsi). DOI: https://doi.org/10.22059/ijbse.2019.271507.665131Robl, D., Sung, L. B., Novakovich, J. H., Marangoni, P. R., Zawadneak, M. A. C., Dalzoto, P. R. & Pimentel, I. C. (2009). Spore production in Paecilomyces lilacinus (Thom.) Samson strains on agro-industrial residues. Brazilian Journal of Microbiology, 40(2), 296-300. DOI: https://doi.org/ 10.1590/S1517-838220090002000016
Sanchez-Rodriguez, A. R., Raya-Díaz, S., Zamarreño, A. M., García-Mina, J. M., del Campillo, M. C., & Quesada-Moraga, E. (2018). An endophytic Beauveria bassiana strain increases spike production in bread and durum wheat plants and effectively controls cotton leafworm (Spodoptera littoralis) larvae. Biological Control 116, 90-102. DOI: https://doi.org/10.1016/ j.biocontrol.2017.01.012Santa, H. S. D., Santa, O. R. D., Brand, D., Vandenberghe, L. P. D. S., & Soccol, C. R. (2005). Spore production of Beauveria bassiana from agro-industrial residues. Brazilian Archives of Biology and Technology, 48(SPE), 51-60. DOI: https://doi.org/10.1590/S1516-89132005000400007
Sedaratian, A., Fathipour, Y., & Moharramipour, S. (2009). Evaluation of resistance in 14 soybean genotypes to Tetranychus urticae (Acari: Tetranychidae). Journal of Pest Science, 82(2), 163-170. DOI: https://doi.org/10.1007/s10340-008-0235-8
Seema, Y., Neeraj, T., & Krishan, K. (2013). Mass production of entomopathogens Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae using rice as a substrate by diphasic liquid-solid fermentation technique. International Journal of Advanced Biological Research, 3(3), 331-335.
Seyed-Talebi, F., Tork, P., Dilmagani, M. R., & Talaei-Hassanloui, R. (2012). Potential synergism between Beauveria bassiana and ether - extract of Ginkgo biloba for control of the two-spotted spider mite, Tetranychus urticae Koch (Acari: Tetranychidae). Journal of Crop Protection, 1, 49 55.
Shi, W. B., & Feng, M. G. (2006). Field efficacy of application of Beauveria bassiana formulation and low rate pyridaben for sustainable control of citrus red mite Panonychus citri (Acari: Tetranychidae) in orchards. Biological Control, 39(2), 210-217. DOI: https://doi.org/10.1016/ j.biocontrol.2006.06.016
Singh, R., Verma, K. D., Singh, J., Nigam, R., Singh, M., & Kumar, A. (2017). Multiplication of entomopathogenic fungus Beauberia bassiana (Balsamo) on solid and liquid media. Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry, SP1, 345-351.
Sujatha, K., Srilakshmi, C., & Lenin, A. (2016). Selection of a suitable medium for the mass production of some selected entomopathogenic fungus. International Journal of Recent Scientific Research, 7(7), 12370-12372. DOI: https://doi.org/10.5555/20183008153
Vega, F. E. (2008). Insect pathology and fungal endophytes. Journal of Invertebrate Pathology, 98, 277-279. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jip.2008.01.008
Wang, L., Zhang, Y., Xie, W., Wu, Q., & Wang. S. (2016). Sublethal effects of spinetoram on the two-spotted spider mite, Tetranychus urticae (Acari: Tetranychidae). Pesticide Biochemistry and Physiology, 132, 102-107. DOI: https://doi.org/10.1016/j.pestbp.2016.02.002Wekesa, V. W., Maniania, N. K., Knapp, M., & Boga, H. I. (2005). Pathogenicity of Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae to the tobacco spider mite Tetranychus evansi. Experimental and Applied Acarology, 36(1), 41-50. DOI: https://doi.org/10.1007/s10493-005-0508-3
Zimmermann, G. (2007). Review on safety of the entomopathogenic fungus Metarhizium anisopliae. Biocontrol Science and Technology, 17(9), 879-920. DOI: https://doi.org/10.1080/ 09583150701593963 | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 158 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 151 |