تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 743 |
تعداد مقالات | 7,072 |
تعداد مشاهده مقاله | 10,128,968 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 6,850,809 |
اثرات نانوذرات سلنیوم بر برخی آنزیمها و فراسنجههای بیوشیمایی مایع اسپرمی مولدین نر قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss) | ||
فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان | ||
دوره 11، شماره 4، اسفند 1402، صفحه 107-131 اصل مقاله (976.19 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22124/japb.2023.22882.1481 | ||
نویسندگان | ||
جواد مهدوی جهان آباد* 1؛ ابوالحسن راستیان نسب2؛ سیدحسین مرادیان1؛ محمدمیثم صلاحی اردکانی3؛ سید عبدالحمید حسینی1؛ اسماعیل کاظمی1 | ||
1کارشناس ارشد تکثیر و پرورش آبزیان، مرکز تحقیقات ژنتیک و اصلاح نژاد ماهیان سردآبی شهید مطهری یاسوج، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، یاسوج، ایران | ||
2استادیار بخش ژنتیک و بیوتکنولوژی، مرکز تحقیقات ژنتیک و اصلاح نژاد ماهیان سردآبی شهید مطهری یاسوج، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، یاسوج، ایران | ||
3دکتری بخش بهداشت و بیماریها، مرکز تحقیقات ژنتیک و اصلاح نژاد ماهیان سردآبی شهید مطهری یاسوج، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، یاسوج، ایران | ||
چکیده | ||
در پژوهش حاضر، تاثیر سطوح مختلف نانوذرات سلنیوم بر آنزیمهای مایع اسپرمی شامل آسپارات آمینوترانسفراز (AST)، آلانین آمینوترانسفراز (ALT)، آلکالین فسفاتاز (ALP)، سوپراکسید دیسموتاز (SOD)، کاتالاز، لیزوزیم، مالون دیآلدهید (MDA) و آلبومین در مولدین نر قزلآلای رنگینکمان بررسی شد. تعداد 84 قطعه ماهی مولد نر سه ساله به چهار گروه آزمایشی با سه تکرار تقسیم شدند. ماهیان با جیرههای حاوی 0 (شاهد)، 5/0، 1 و 2 میلیگرم نانوذرات سلنیوم در کیلوگرم جیره به مدت 60 روز تغذیه شدند. نتایج بررسی مایع اسپرمی ماهیان تیمارهای مختلف از نظر میزان ALP، ALT و لیزوزیم مایع اسپرمی اختلاف معنیداری را نشان نداد (05/0P>). بیشترین میزان آنزیم ALT، در تیمار 2 میلیگرم نانوذرات سلنیوم بود و میزان MDA، ALT و ALP مایع اسپرمی در تیمارهای دیگر نسبت به تیمار شاهد به صورت معنیداری بالاتر بود (05/0>P). بر اساس نتایج به دست آمده برای افزایش بازده تکثیر مولدین نر قزلآلای رنگینکمان و بهبود شاخصهای آنتیاکسیدانی و ایمنی مایع اسپرمی، میتوان افزودن مقدار 2 میلیگرم نانوذرات سلنیوم در کیلوگرم را به جیره غذایی توصیه کرد. | ||
کلیدواژهها | ||
قزلآلای رنگینکمان؛ فراسنجههای بیوشیمیایی؛ نانوذرات سلنیوم؛ مایع اسپرمی | ||
موضوعات | ||
فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان | ||
مراجع | ||
Ahsan U., Kamran Z., Raza I., Ahmad S., Babar W., Riaz M.H. and Iqbal Z. 2014. Role of selenium in male reproduction- A review. Journal of Animal Reproduction Science, 146: 55–62. doi: 10.1016/j.anireprosci.2014.01. 009 Al-Daraji H.J. and Tahir A.O. 2013. Effect of L-carnitine supplementation on seminal plasma quality of Iraqi drakes. Indian Journal of Applied Research, 3: 10–14. Alishahi M., Ranjbar M.M., Ghorbanpour M., Peyghan R., Mesbah M. and Razi Jalali M. 2010. Effects of dietary Aloe vera on some specific and nonspecific immunity in the common carp (Cyprinus carpio). Iranian Journal of Veterinary Medicine, 4(3): 189–195. doi: 10.22059/IJVM.2010.21352 Armstrong A.M., Chestnutt J.E., Gormly M.Y. and Young I.S. 1996. The effect of dietary treatment on lipid peroxidation and antioxidant status in newly diagnosed on-insulin dependent diabetes. International Society for Free Radical Research, 21: 719–726. doi: 10.1016/08915849(96)001 69-4 Ashouri S., Keyvanshokooh S., Salati A.P., Johari S.A. and Pasha-Zanoosi H. 2015. Effects of different levels of dietary selenium nanoparticles on growth performance, muscle composition, blood biochemical profiles and antioxidant status of common carp (Cyprinus carpio). Journal of Aquaculture, 446: 25–29. doi: 10.1016/j.aquaculture.2015.04.021 Behne D., Weiler H. and Kyriakopoulos A. 1996. Effects of selenium deficiency on testicular morphology and function in rats. Journal of Reproduction and Fertility, 106: 291–297. doi: 10.1530/jrf.0.1060291 Billard R., Cosson J., Crim L.W. and Suquet M. 1995. Sperm physiology and quality. P: 25–52. In: Bromage N. and Roberts R. (Eds.). Broodstock Management and Egg and Larval Quality. Blackwell, UK. Bunglavan S.J., Garg A.K., Dass R.S. and Shrivastava S. 2014. Effect of supplementation of different levels of selenium as nanoparticles/sodium selenite on blood biochemical profile and humoral immunity in male Wistar rats. Journal of Veterinary World, 7(12): 1075–1081. doi: 10.14202/vetworld.2014.1075-1081 Cabrita E., Martinez-Paramo S., Gavaia P.J., Riesco M., Valcarce D., Sarasquete C., Herraez M. and Robles V. 2014. Factors enhancing fish sperm quality and emerging tools for sperm analysis. Journal of Aquaculture, 432: 389–401. doi: 10.1016/j.aquaculture.2014. 04.034 Chiu S.T., Hsieh S.L., Yeh S.P., Jian S.J., Cheng W. and Liu C.H. 2010. The increase of immunity and disease resistance of the giant freshwater prawn, Macrobrachium rosenbergii by feeding with selenium enriched-diet. Journal of Fish and Shellfish Immunology, 29: 623–629. doi: 10.1016/j.fsi.2010. 06.012 Decker H. and Van Holde K.E. 2010. Oxygen and the Evolution of Life. Springer Science and Business Media, Germany. 169P. doi: 10.1007/978-3-642-13179-0 Dreanno C., Suquet M., Desbruyeres E., Cosson J., Le Delliou H. and Billard R. 1998. Effect of urine on semen quality in turbot (Psetta maxima). Journal of Aquaculture, 169: 247–262. doi: 10.1016/S0044-8486(98)00262-2 Ellis A.E. 1990. Lysozyme assays. P: 101–103. In: Stolen J.S., Fletcher T.C., Anderson D.P. and Van Muiswinkel W.B. (Eds.). Techniques in Fish Immunology, Vol. 1. SOS Publications, USA. Forni L.G. and Willson R.L. 1986. Thiyl and phenoxyl free radicals and NADH direct observation of one-electron oxidation. Biochemical Journal, 240: 897– 903. doi: 10.1042/bj24 00897 Goth L. 1991. A simple method for determination of serum catalase activity and revision of reference range. International Journal of Clinical Chemistry, 196: 143–151. doi: 10.1016/0009-8981(91)90067-m Gronczewska J., Zietara M.S., Biegniewska A. and Skorkowski E.F. 2003. Enzyme activities in fish spermatozoa with focus on lactate dehydrogenase isoenzymes from herring (Clupea harengus). Journal of Comparative Biochemistry and Physiology, 134: 399–406. doi: 10.1016/S1096-4959 (02)00192-6 Hanrahan J.R., Chebib M. and Johnston G.A. 2011. Flavonoid modulation of GABA (A) receptors. British Journal of Pharmacology, 163: 234–45. doi: 10.1111/j.14765381.2011.01228.x Hashida K., Sasaki K. and Makino N. 2000. Interactions of nitric oxide and oxygen in cytotoxicity: Proliferation and antioxidant enzyme activities of endothelial cells in culture. International Society for Free Radical Research, 33: 147–156. doi: 10.1080/107157 60000300701 Hedaoo M., Khllare K., Meshram M., Sahatpure S. and Patil M. 2008. Study of some serum trace minerals in cyclic and non-cyclic surti buffaloes. Journal of Veterinary World, 1: 71–72. Imanpoor M.R. and Zad Majid V. 2009. Introduction on Reproduction of Fishes (In Persian). Gorgan University of Agricultural Science and Natural Resources Publishing, Iran. 190P. Johari S. 2014. Toxicity effect of colloidal silver nanoparticles on fertilization capacity and reproduction success of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of Nanomedicine Research, 1(1): 1–4. doi: 10.15406/ jnmr.2014.01.00001 Khadjeh G.H. and Peyghan R. 2007. Evaluation of some blood serum biochemical parameters of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) cultured in earthen ponds. Journal of Veterinary Research, 62(2): 197–207. Koprucu K., Yonar M.E. and Ozcan S. 2015. Effect of dietary n-3 polyunsaturated fatty acids on antioxidant defense and sperm quality in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) under regular stripping conditions. Journal of Animal Reproduction Science, 163: 135–143. doi: 10.1016/j.anireprosci.2015.10.008 Lahnsteiner F., Berger B. and Weismann T. 1998. Determination of semen quality of the rainbow trout by sperm motility, seminal plasma parameters and spermatozoal metabolism. Journal of Aquaculture, 163: 163–181. doi: 10.1016/S0044-8486(98)00243-9 Lahnsteiner F., Patzner R.A. and Weismann T. 1993. Energy resources of spermatozoa of the rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) (Pisces, Teleostei). Journal of Reproduction Nutrition Development, 33: 349–360. doi: 10.1051/rnd:19930404 Lahnsteiner F., Berger B., Weismann T. and Patzner R.A. 1996. Physiological and biochemical determination of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss, semen quality for cryopreservation. Journal of Applied Aquaculture, 6(4): 47–73. doi: 10.1300/J028v06n04_05 Marklund S.L. and Marklund G. 1974. Involvement of the superoxide anion radical in the auto oxidation of pyrogallol and a convenient assay for superoxide dismutase. European Journal of Biochemistry, 47(3): 469–474. doi: 10.1111/j.1432-1033.1974.tb03714.x Miura T., Yamauchi K., Takahashi H. and Nagahama Y. 1991. The role of hormones in the acquisition of sperm motility in salmonid fish. Journal of Experimental Zoology, 261: 359–363. doi: 10.1002/jez. 1402610316 Morisawa M., Okuno M., Suzuki K., Morisawa S. and Ishida K. 1983a. Initiation of sperm motility in teleosts. Journal of Submicroscopic Cytology and Pathology. 15: 61–65. Morisawa M., Suzuki K. and Morisawa S. 1983b. Effects of potassium and osmolality on spermatozoan motility of salmonid fishes. Journal of Experimental Biology, 107: 105–113. doi: 10.1242/jeb.107.1.105 Morisawa M., Suzuki K., Shimizu H., Morisawa S. and Yasuda K. 1983c. Effects of osmolality and potassium on motility of spermatozoa from freshwater cyprinid fishes. Journal of Experimental Biology, 107: 95–103. doi: 10.1242/jeb.107.1.95 Moss D.V. and Henderson A.R. 1999. Clinical enzymology. P: 617–721. In: Burtis C.A. and Ashwood E.R. (Eds.). Tietz Textbook of Clinical Chemistry. Saunders Company, USA. doi: 10.1515/cclm.2000.37.11-12.1136 Muscatello J.R., Bennett P.M., Himbeault K.T., Belknap A.M. and Janz D.M. 2006. Larval deformities associated with selenium accumulation in northern pike (Esox lucius) exposed to metal mining effluent. Journal of Environmental science and technology, 40: 6506–6512. doi: 10.1021/es060661h Naderi M., Keyvanshokooh S., Salati A.P. and Ghaedi A. 2017. Effects of dietary vitamin E and selenium nanoparticles supplementation on acute stress responses in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) previously subjected to chronic stress. Aquaculture, 473: 215–222. doi: 10.1016/j.aquaculture.2017.02.020 Ramsden S.R., Smith T.J., Shaw B.J. and Handy R.D. 2009. Dietary exposure to titanium dioxide nanoparticles in rainbow trout, (Oncorhynchus mykiss): No effect on growth, but subtle biochemical disturbances in the brain. Journal of Animal Nutrition, 2: 1–11. doi: 10.1007/s10646-009-0357-7 Rurangwa E., Biegniewska A., Slominska E., Skorkowski E.F. and Ollevier F. 2002. Effect of tributyltin on adenylate content and enzyme activities of teleost sperm: A biochemical approach to study the mechanisms of toxicant reduced spermatozoa motility. Journal of Comparative Biochemistry and Physiology, 131: 335–344. doi: 10.1016/S1532-0456(02)00019-4 Sato T., Ose Y. and Sakai T. 1980. Toxicological effect of selenium on fish. Journal of Environmental Pollution, 21: 217–224. doi: 10.1016/0143-1471(80)90166-X Sheikhzadeh N., Asadpour R., Jafari Jozani R.A. and Tayefi-Nasrabadi H. 2010. Effect of Ergosan on semen quality of male rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) broodstock. Journal of Animal Reproduction Science, 122: 183–188. doi: 10.1016/j.anireprosci.2010.08.008 Shi L., Zhang C., Yue W., Shi L., Zhu X. and Lei F. 2010. Short-term effect of dietary selenium-enriched yeast on semen parameters, antioxidant status and Se concentration in goat seminal plasma. Journal of Animal Feed Science and Technology, 157: 104–108. doi: 10.1016/j.anifeedsci. 2010.02.006 Soengas J.L., Agra-Lago M.J., Carballo B. and Veira J.A.R. 1996. Effect of an acute exposure to sublethal concentrations of cadmium on liver carbohydrate metabolism of Atlantic salmon (Salmo salar). Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 57(4): 625–631. doi: 10.1007/s00128990023610.1016/ Turanov A.A., Malinouski M. and Gladyshev V.N. 2011. Selenium and male reproduction. P: 409–417. In: Selenium: Its Molecular Biology and Role in Human Health. Springer, USA. doi: 10.1007/978-1-4614-1025-6_32 Ugochukwu N.H. and Cobourn M.K. 2003. Modification of renal oxidative stress and lipid peroxidation in streptozotocin-induced diabetic rats treated with extracts from Gongronema latifolium leaves. Clinica Chimica Acta, 336: 73–81. doi: 10.1016/S0009-8981(03)00325-5 Vesely T., Reschova S., Pokorova D., Hulova J. and Nevorankova Z. 2006. Production of monoclonal antibodies against immunoglobulin heavy chain in common carp (Cyprinus carpio L.). Journal of Veterinarni Medicina, 51(5): 296–302. doi: 10.17221/5549-VETMED | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 288 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 74 |