دانشگاه گیلان
معاونت پژوهش و فناوری دانشگاه گیلان
انتشارات دانشگاه گیلان

 آمار

تعداد نشریات31
تعداد شماره‌ها784
تعداد مقالات7,519
تعداد مشاهده مقاله23,003,682
تعداد دریافت فایل اصل مقاله7,550,224
رشیدی, حامد, رضائیان, نجمه. (1402). اثر تمرینات ترکیبی هوازی و مقاومتی بر سطوح فعال کنندۀ RNA گیرندۀ استروئیدی بافت چربی و شاخص مقاومت به انسولین در موش‌های سالمند ماده. فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان, 13(2), 45-56. doi: 10.22124/jme.2023.25048.312
حامد رشیدی; نجمه رضائیان. "اثر تمرینات ترکیبی هوازی و مقاومتی بر سطوح فعال کنندۀ RNA گیرندۀ استروئیدی بافت چربی و شاخص مقاومت به انسولین در موش‌های سالمند ماده". فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان, 13, 2, 1402, 45-56. doi: 10.22124/jme.2023.25048.312
رشیدی, حامد, رضائیان, نجمه. (1402). 'اثر تمرینات ترکیبی هوازی و مقاومتی بر سطوح فعال کنندۀ RNA گیرندۀ استروئیدی بافت چربی و شاخص مقاومت به انسولین در موش‌های سالمند ماده', فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان, 13(2), pp. 45-56. doi: 10.22124/jme.2023.25048.312
رشیدی, حامد, رضائیان, نجمه. اثر تمرینات ترکیبی هوازی و مقاومتی بر سطوح فعال کنندۀ RNA گیرندۀ استروئیدی بافت چربی و شاخص مقاومت به انسولین در موش‌های سالمند ماده. فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان, 1402; 13(2): 45-56. doi: 10.22124/jme.2023.25048.312

اثر تمرینات ترکیبی هوازی و مقاومتی بر سطوح فعال کنندۀ RNA گیرندۀ استروئیدی بافت چربی و شاخص مقاومت به انسولین در موش‌های سالمند ماده

سوخت و ساز و فعالیت ورزشی
مقاله 5، دوره 13، شماره 2، آذر 1402، صفحه 45-56    اصل مقاله (560.4 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی Released under (CC BY-NC) license I Open Access I
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22124/jme.2023.25048.312
نویسندگان
حامد رشیدی؛ نجمه رضائیان*
گروه تربیت بدنی و علوم ورزشی، واحد بجنورد، دانشگاه آزاد اسلامی، بجنورد، ایران
چکیده
هدف از مطالعه حاضر بررسی اثر هشت هفته تمرینات ترکیبی هوازی و مقاومتی بر سطوح SRA بافت چربی و شاخص مقاومت به انسولین در موش‌های سالمند بود. 20 سر رت ماده (28-24 هفته، میانگین وزنی 30/13±20/379 گرم) انتخاب و به شیوه تصادفی در دو گروه تجربی و کنترل (10 سر در هر گروه) تقسیم شدند. موش‌ها در گروه تجربی در هشت هفته تمرینات ترکیبی هوازی و مقاومتی، شش روز در هفته شرکت کردند. تمرینات هوازی شامل دویدن روی تردمیل در شدت کم تا متوسط (60-40 درصد سرعت بیشینه به دست آمده در آزمون دویدن بیشینه)، 60 دقیقه در هر جلسه و بدون شیب تردمیل بود. و تمرینات مقاومتی نیز بالا رفتن از نردبان با شدتی معادل 60-40 درصد از نیروی به دست آمده در آزمون بار بیشینه، 15 تکرار با یک دقیقه تناوب استراحت و 45 دقیقه در هر جلسه تمرینی را شامل می‌شد. اجرای هشت هفته تمرینات ترکیبی هوازی و مقاومتی ضمن افزایش معنی‌دار SRA بافت چربی با کاهشی معنی‌دار در سطوح سرمی انسولین، گلوکز ناشتای خون، شاخص مقاومت به انسولین و وزن بدن در گروه تجربی در مقایسه با گروه کنترل همراه بود. علاوه بر این، اجرای هشت هفته تمرینات ترکیبی هوازی و مقاومتی سبب کاهش معنی‌دار وزن بدن در گروه تجربی در پس آزمون در مقایسه با پیش آزمون گردید.چنین به نظر می‌رسد اجرای اجرای هشت هفته تمرینات ترکیبی هوازی و مقاومتی با وجود افزیش سطوح SRA در بهبود مقاومت به انسولین و ترکیب بدن نقش دارد.
کلیدواژه‌ها
فعال کننده RNA گیرنده استروئیدی (SRA)؛ تمرینات ترکیبی هوازی و مقاومتی؛ مقاومت به انسولین؛ سالمندی
مراجع
  1. Abedi B, Okhovat E. The Effect of 8 Weeks of High-Intensity Interval Training (HIIT) on Serum Adiponectin Levels and Insulin Resistance of Women with Type 2 Diabetes. Journal of Sport Biosciences. 2016; 8(3): 411-426. [In Persian]
  2. Aouadi M, Binetruy B, Caron L, Le Marchand-Brustel Y, Bost F. Role of MAPKs in development and differentiation: lessons from knockout mice. Biochimie. 2006; 88:1091–1098.
  3. Barros RPA, Machado UF, Gustafsson JA. Estrogen receptors: new players in diabetes mellitus. Trends Mol Med. 2006; 12(9):425-31.
  4. Bonnefond A, Froguel P. Rare and common genetic events in type 2 diabetes: what should biologists know? Cell Metab. 2015; 21:357–368.
  5. Centers for Disease Control and Prevention (CDC) Public Health and Aging: Trends in Aging - United States and Worldwide. JAMA. 2003; 289:1371–3.
  6. Chen G, Qiu C, Zhang Q, Liu B, Cui Q. Genome-wide analysis of human SNPs at long intergenic noncoding RNAs. Hum Mutat. 2013; 34:338–344. 
  7. Chen G, Yu D, Nian X, Liu J, Koenig R, Xu B, Sheng L. LncRNA SRA promotes hepatic steatosis through repressing the expression of adipose triglyceride lipase (ATGL). Sci Rep. 2016; 6:35531.
  8. Choi SB, Jang JS, Park S. Estrogen and exercise may enhance beta-cell function and mass via insulin receptor substrate 2 induction in ovariectomized diabetic rats. Endocrinology. 2005; 146(11):4786-94.
  9. Colberg SR, Sigal RJ, Fernhall B, Regensteiner JG, Blissmer BJ, Rubin RR, Chasan-Taber L, Albright AL, Braun B. Exercise and type 2 diabetes: the American College of Sports Medicine and the American Diabetes Association: joint position statement. Diabetes Care. 2010; 33(12):e147–67.
  10. Coleman KM, Lam V, Jaber BM, Lanz RB, Smith CL. SRA coactivation of estrogen receptor-alpha is phosphorylation-independent, and enhances 4-hydroxytamoxifen agonist activity. Biochem Biophys Res Commun. 2004; 323:332–338.
  11. Cowie CC, Rust KF, Ford ES, Eberhardt MS, Byrd-Holt DD, Li C, Williams DE, Gregg EW, Bainbridge KE, Saydah SH, Geiss LS. Full accounting of diabetes and pre-diabetes in the U.S. population in 1988-1994 and 2005-2006. Diabetes Care. 2009; 32:287–294.
  12. Cristancho AG, Lazar MA. Forming functional fat: a growing understanding of adipocyte differentiation. Nat Rev Mol Cell Biol. 2011; 12: 722–734.
  13. Deblois G, Giguère V. Ligand-independent coactivation of ERα AF-1 by steroid receptor RNA activator (SRA) via MAPK activation. J Steroid Biochem Mol Biol. 2003; 85: 123–131.
  14. Ezkurdia I, Juan D, Rodriguez JM, Frankish A, Diekhans M, Harrow J, Vazquez J, Valencia A, Tress ML. Multiple evidence strands suggest that there may be as few as 19,000 human protein-coding genes. Hum Mol Genet. 2014; 23: 5866–5878.
  15. Friedrichs F, Zugck C, Rauch Gj, Ivandic B, Weichenhan D, Müller-Bardorff M, Meder B, Mokhtari NE, Regitz-Zagrosek V, Hetzer R, Schäfer A, Schreiber S, Chen J, Neuhaus I, Ji R, Siemers NO, Frey N, Rottbauer W, Katus HA, Stoll M. HBEGF, SRA1, and IK: Three cosegregating genes as determinants of cardiomyopathy. Genome Res. 2009; 19(3): 395–403.
  16. Goulet ED, Hassaine A, Dionne IJ, Gaudreau P, Khalil A, Fulop T, Shatenstein B, Tessier D, Morais JA. Frailty in the elderly is associated with insulin resistance of glucose metabolism in the post-absorptive state only in the presence of increased abdominal fat. Exp Gerontol. 2009; 44:740–44.
  17. Hangauer MJ, Vaughn IW, McManus MT. Pervasive transcription of the human genome produces thousands of previously unidentified long intergenic noncoding RNAs. PLoS Genet. 2013; 9:e1003569.
  18. Harries LW. Long non-coding RNAs and human disease. Biochem Soc Trans. 2012; 40 (4): 902–906.
  19. Hordern MD, Dunstan DW, Prins JB, Baker MK, Singh MAF, Coombes JS. Exercise prescription for patients with type 2 diabetes and pre-diabetes: a position statement from Exercise and Sport Science Australia. Journal of Science and Medicine in Sport. 2012; 15(1): 25–31.
  20. Hubé F, Velasco G, Rollin J, Furling D, Francastel C. Steroid receptor RNA activator protein binds to and counteracts SRA RNA-mediated activation of MyoD and muscle differentiation. Nucleic Acids Research. 2011; 39, 513–525.
  21. Kochumon SH, Arefanian H, Sindhu S, Thomas R, Jacob T, Al-Sayyar A, Shenouda S, Al-Rashed F, Koistinen HA, Al-Mulla F, Tuomilehto J, Ahmad R. Expression of Steroid Receptor RNA Activator 1 (SRA1) in the Adipose Tissue Is Associated with TLRs and IRFs in Diabesity. Cells. 2022; 11(24): 4007.
  22. Kumar V, Westra HJ, Karjalainen J, Zhernakova DV, Esko T, Hrdlickova B, Almeida R, Zhernakova A, Reinmaa E, Vosa U, Hofker MH, Fehrmann RS, Fu J, Withoff S, Metspalu A, Franke L, Wijmenga C. Human disease-associated genetic variation impacts large intergenic non-coding RNA expression. PLoS Genet. 2013; 9:e1003201.
  23. Lanz RB, McKenna NJ, Onate SA, Albrecht U, Wong J, Tsai SY, Tsai MJ, O’Malley BW. A steroid receptor coactivator, SRA, functions as an RNA and is present in an SRC-1 complex. Cell. 1999; 97:17–27.
  24. Lanz RB, Razani B, Goldberg AD, O’Malley BW. Distinct RNA motifs are important for coactivation of steroid hormone receptors by steroid receptor RNA activator (SRA) Proc Natl Acad Sci U S A. 2002; 99:16081–16086.
  25. Larsen L, Ropke C. Suppressors of cytokine signalling: SOCS. APMIS. 2002; 110: 833–844.
  26. Liu S, Sheng L, Miao H, Saunders TL, MacDougald OA, Koenig RJ, Xu B. SRA gene knockout protects against diet-induced obesity and improves glucose tolerance. J Biol Chem. 2014b; 289:13000–13009.
  27. Liu S, Xu R, Gerin I, Cawthorn WP, Macdougald OA, Chen XW, Saltiel AR, Koenig RJ, Xu B. SRA regulates adipogenesis by modulating p38/JNK phosphorylation and stimulating insulin receptor gene expression and downstream signaling. PLoS One. 2014a; 9:e95416.
  28. Lumeng CN, Saltiel AR. Inflammatory links between obesity and metabolic disease. Journal of Clinical Investigation. 2011; 121: 2111–2117.
  29. Manning AM, Davis RJ. Targeting JNK for therapeutic benefit: from junk to gold? Nat Rev.Drug Discov. 2003; 2:554–565.
  30. Mathews ST, Chellam N, Srinivas PR, Cintron VJ, Leon M A, Goustin AS, Grunberger G. α2-HSG, a specific inhibitor of insulin receptor autophosphorylation, interacts with the insulin receptor. Molecular and Cellular Endocrinology. 2000; 164(1-2): 87-98.
  31. Ronn SG, Billestrup N, Mandrup-Poulsen T. Diabetes and suppressors of cytokine signaling proteins. Diabetes. 2007; 56:541–548.
  32. Sanches IC, Buzin M, Conti FF, Dias DDS, Santos CPD, Sirvente R, Salemi VMC, Llesuy S, Irigoyen M-C, Angelis KD. Combined aerobic and resistance exercise training attenuates cardiac dysfunctions in a model of diabetes and menopause. PLoS One. 2018; 13(9):e0202731.
  33. Shiffler JA, Goerger KA, Gorres-Martens BK. Estrogen receptor α activation modulates the gut microbiome and type 2 diabetes risk factors. Physiol Rep. 2022; 10(11):e15344.
  34. Siersbaek R, Nielsen R, Mandrup S. Transcriptional networks and chromatin remodeling controlling adipogenesis. Trends Endocrinol Metab. 2012; 23: 56–64.
  35. Sigal RJ, Kenny GP, Wasserman DH, Castaneda-Sceppa C, White RD. Physical activity/exercise and type 2 diabetes: a consensus statement from the American Diabetes Association. Diabetes care. 2006; 29(6):1433-8.
  36. Slopiena R, Wender-Ozegowskab E, Meczekalskia B, Zozulinska-Ziolkiewiczd D, Jaremekd JD, Canoe A, Chedrauif P, Goulisg DG, Lopesh P, Mishraj G, Mueckk A, Reesl M, Senturkm LM, Simoncinin T, Stevensono JC, Stutep P, Tuomikoskiq P, Paschour SA, Anagnostisg P, Lambrinoudaki I. Menopause and diabetes: EMAS clinical guide. Maturitas. 2018; 117: 6-10.
  37. Wild S, Roglic G, Green A, Sicree R, King H. Global prevalence of diabetes: estimates for the year 2000 and projections for 2030. Diabetes Care. 2004; 27:1047–1053.
  38. Wu B, Ding J, Chen A, Song Y, Xu C, Tian F, Zhao J. Aerobic exercise improves adipogenesis in diet-induced obese mice via the lncSRA/p38/JNK/PPARγ pathway. Nutrition Research. 2022a; 105: 20-32
  39. Wu B, Xu C, Tian Y, Zeng Y, Yan F, Chen A, Zhao J, Chen L. Aerobic exercise promotes the expression of ATGL and attenuates inflammation to improve hepatic steatosis via lncRNA SRA. Scientific Reports. 2022b; 12: 5370.
  40. Xu B, Gerin I, Miao H, Vu-Phan D, Johnson CN, Xu R, Chen XW, Cawthorn WP, MacDougald OA, Koenig RJ. Multiple roles for the non-coding RNA SRA in regulation of adipogenesis and insulin sensitivity. PLoS One. 2010; 5:e14199.
  41. Xu B, Yang WH, Gerin I, Hu CD, Hammer GD, Koenig RJ. Dax-1 and steroid receptor RNA activator (SRA) function as transcriptional coactivators for steroidogenic factor 1 in steroidogenesis. Mol Cell Biol. 2009; 29(7):1719-34.
  42. Yang S, Sun J. LncRNA SRA deregulation contributes to the development of atherosclerosis by causing dysfunction of endothelial cells through repressing the expression of adipose triglyceride lipase. Mol Med Rep. 2018; 18:5207-5214.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 397
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 115


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب