تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 743 |
تعداد مقالات | 7,072 |
تعداد مشاهده مقاله | 10,150,496 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 6,858,187 |
اثرات مواجهه با نیترات نقره بر سیستم دفاعی آنتیاکسیدانی و شاخصهای متابولیکی میگوی وانامی (Litopenaeus vannamei) | ||
فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان | ||
دوره 10، شماره 4، اسفند 1401، صفحه 41-58 اصل مقاله (457.48 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22124/japb.2022.21372.1452 | ||
نویسندگان | ||
بهنام آریان1؛ جواد قاسم زاده2؛ سراج بیتا* 2 | ||
1کارشناس ارشد تکثیر و پرورش آبزیان، گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران | ||
2استادیار گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران | ||
چکیده | ||
قرارگیری آبزیان در معرض نقره همانند فلزات سنگین دیگر به دلیل تولید رادیکالهای آزاد سبب ایجاد آسیب اکسیداتیو و تغییرات بیوشیمیایی در موجودات میشود. بنابراین، در مطالعه حاضر تغییرات سیستم دفاعی آنتیاکسیدانی و متابولیکی میگوی وانامی (Litopenaeus vannamei) طی 21 روز مواجهه با نیترات نقره بررسی شد. بدین منظور میگوها با غلظتهای مختلف نیترات نقره شامل تیمار 1: LC50%10 (0084/0 میلیگرم در لیتر)، تیمار 2: LC50%25 (021/0 میلیگرم در لیتر)، تیمار 3: LC50%50 (042/0 میلیگرم در لیتر) و تیمار 4: LC50%75 (063/0 میلیگرم در لیتر) و تیمار شاهد مواجه شدند. طبق نتایج، فعالیت سوپراکسید دیسموتاز در تیمارهای 3 و 4 و ظرفیت آنتیاکسیدانی کل در تیمار 4 به طوری معنیداری کاهش یافت (05/0P<). اما فعالیت مالون دیآلدئید در تیمار 4 افزایش معنیداری داشت (05/0P<). فعالیت کاتالاز و گلوتاتیون در هیچ یک از تیمارها با تیمار شاهد تفاوت معنیداری نشان نداد (05/0P>). از بین شاخصهای متابولیکی، فقط در تیمار4 پروتئین کاهش معنیدار و گلوکز، کلسترول و تریگلیسیرید افزایش معنیدار داشتند (05/0P<). اما میزان فسفر و کلسیم تفاوت معنیداری را نشان نداد (05/0P>). در مجموع مواجهه با غلظت LC50%75 نیترات نقره با کاهش قابل توجه فعالیت آنزیمهای آنتیاکسیدانی و افزایش مالون دیآلدئید سبب آسیب اکسیداتیو و اختلال در برخی شاخصهای متابولیکی میگوی وانامی شد. | ||
کلیدواژهها | ||
سمیت مزمن؛ نقره؛ استرس اکسیداتیو؛ شاخصهای بیوشیمیایی؛ میگوی وانامی | ||
موضوعات | ||
فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان | ||
مراجع | ||
Acedo-Valdez M.R., Grijalva-Chon J.M., Larios-Rodriguez E., Maldonado-Arce A.D., Mendoza-Cano F., Sanchez-Paz J.A. and Castro-Longoria R. 2017. Antibacterial effect of biosynthesized silver nanoparticles in Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei (Boone) infected with necrotizing hepatopancreatitis bacterium (NHP-B). Latin American Journal of Aquatic Research, 45(2): 421–430. Afifi M., Saddick S. and Zinada O.A.A. 2016. Toxicity of silver nanoparticles on the brain of Oreochromis niloticus and Tilapia zillii. Saudi Journal of Biological Sciences, 23(6): 754–760. Baker C., Pradhan A., Pakstis L., Pochan D.J. and Shah S.I. 2005. Synthesis and antibacterial properties of silver nanoparticles. Journal of Nanoscience and Nanotechnology, 5(2): 244–249. Benzie I.F. and Strain J.J. 1996. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of “antioxidant power”: the FRAP assay. Analytical Biochemistry, 239(1): 70–76. Campa-Cordova A.I., Hernandez-Saavedra N.Y. and Ascencio F. 2002. Superoxide dismutase as modulator of immune function in American white shrimp (Litopenaeus vannamei). Comparative Biochemistry and Physiology (C), 133(4): 557–565. Das S., Tseng L.C., Chou C., Wang L., Souissi S. and Hwang J.S. 2019. Effects of cadmium exposure on antioxidant enzymes and histological changes in the mud shrimp Austinogebia edulis (Crustacea: Decapoda). Environmental Science and Pollution Research, 26(8): 7752–7762. Ding W.X., Shen H.M. and Ong C.N. 2000. Microcystic cyanobacteria extract induces cytoskeletal disruption and intracellular glutathione alteration in hepatocytes. Environmental Health Perspectives, 108(7): 605–609. Dong X., Liu Q., Zhao W., Ou J., Jiang F., Guo H. and Lv L. 2021. Effects of ammonia-N stress on the antioxidant enzymes, heat shock proteins, and apoptosis-related genes of Macrobrachium rosenbergii. Italian Journal of Animal Science, 20(1): 453–464. FAO. 2020. Sustainability in Action. State of World Fisheries and Aquaculture. Food and Agriculture Organization, Rome. 244P. Fatima H., Ayub Z., Ali S.A. and Siddiqui G. 2013. Biochemical composition of the hemolymph, hepatopancreas, ovary, and muscle during ovarian maturation in the penaeid shrimps Fenneropenaeus merguiensis and F. penicillatus (Crustacea: Decapoda). Turkish Journal of Zoology, 37(3): 334–347. Foldbjerg R. and Autrup H. 2013. Mechanisms of silver nanoparticle toxicity. Archives of Basic and Applied Medicine, 1(1): 5–15. Frias-Espericueta M.G., Voltolina D., Osuna-Lopez I. and Izaguirre-Fierro G. 2009. Toxicity of metal mixtures to the Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei postlarvae. Marine Environmental Research, 68(5): 223–226. Goncalves-Soares D., Zanette J., Yunes J.S., Yepiz-Plascencia G.M. and Bainy A.C. 2012. Expression and activity of glutathione S-transferases and catalase in the shrimp Litopenaeus vannamei inoculated with a toxic Microcystis aeruginosa strain. Marine Environmental Research, 75: 54–61. Huang Y.J., Zhang N.N., Fan W.J., Cui Y.Y., Limbu S.M., Qiao F., Zhao Y.L., Chen L.Q., Du Z.Y. and Li D.L. 2018. Soybean and cottonseed meals are good candidates for fishmeal replacement in the diet of juvenile Macrobrachium nipponense. Aquaculture International, 26(1): 309–324. Juarez-Moreno K., Mejia-Ruiz C.H., Diaz F., Reyna-Verdugo H., Re A.D., Vazquez-Felix E.F. and Bogdanchikova N. 2017. Effect of silver nanoparticles on the metabolic rate, hematological response, and survival of juvenile white shrimp Litopenaeus vannamei. Chemosphere, 169: 716–724. Korolyuk M.A., Ivanova L.I., Maiorova I.G. and Tokarev V.E. 1988. A method for measuring catalase activity. Laboratornoe Delo, (1): 16–19. Li X., Liu Y., Song L. and Liu J. 2003. Responses of antioxidant systems in the hepatocytes of common carp (Cyprinus carpio L.) to the toxicity of microcystin-LR. Toxicon, 42(1): 85–89. Mohamed A.H., Sheir S.K., Osman G.Y. and Abd-El Azeem H.H. 2014. Toxic effects of heavy metals pollution on biochemical activities of the adult brine shrimp, Artemia salina. Canadian Journal of Pure and Applied Sciences, 8: 3019–3028. Neves C.A., Santos E.A. and Bainy A.C.D. 2000. Reduced superoxide dismutase activity in Palaemonetes argentinus (Decapoda, Palemonidae) infected by Probopyrus ringueleti (Isopoda, Bopyridae). Diseases of Aquatic Organisms, 39(2): 155–158. Palaniappan P.R. and Karthikeyan S. 2009. Bioaccumulation and depuration of chromium in the selected organs and whole body tissues of freshwater fish Cirrhinus mrigala individually and in binary solutions with nickel. Journal of Environmental Sciences, 21(2): 229–236. Parrilla-Taylor D.P. and Zenteno-Savin T. 2011. Antioxidant enzyme activities in Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei) in response to environmental hypoxia and reoxygenation. Aquaculture, 318(3-4): 379–383. Sanchez A., Pascual C., Sanchez A., Vargas-Albores F., Le Moullac G. and Rosas C. 2001. Hemolymph metabolic variables and immune response in Litopenaeus setiferus adult males: The effect of acclimation. Aquaculture, 198(1-2): 13–28. Song Y.L., Yu C.I., Lien T.W., Huang C.C. and Lin M.N. 2003. Haemolymph parameters of Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei) infected with Taura syndrome virus. Fish and Shellfish Immunology, 14(4): 317–331. Suresh D.R., Annam V., Pratibha K. and Prasad B.M. 2009. Total antioxidant capacity- a novel early bio-chemical marker of oxidative stress in HIV infected individuals. Journal of Biomedical Science, 16(1): 1–4. Tanwir K., Javed M.T., Shahid M., Akram M.S. and Ali Q. 2021. Antioxidant defense systems in bioremediation of organic pollutants. P: 505–521. In: Hasanuzzaman M. and Vara Prasad M.N. (Eds.). Handbook of Bioremediation. Mika Haley, India. Tietze F. 1969. Enzymatic method for quantitative determination of nanogram amounts of total and oxidized glutathione: Applications to mammalian blood and other tissues. Analytical Biochemistry, 27: 502–522. Wang L., Feng J., Wang G., Guan T., Zhu C., Li J. and Wang H. 2021. Effects of cadmium on antioxidant and non-specific immunity of Macrobrachium nipponense. Ecotoxicology and Environmental Safety, 224: 1–12 (112651). Wang W.N., Li B.S., Liu J.J., Shi L., Alam M.J., Su S.J., Wu J., Wang L. and Wang A.L. 2012. The respiratory burst activity and expression of catalase in white shrimp, Litopenaeus vannamei, during long-term exposure to pH stress. Ecotoxicology, 21(6): 1609–1616. Winterbourn C.C., Hawkins R.E., Brian M. and Carrell R.W. 1975. The estimation of red cell superoxide dismutase activity. The Journal of Laboratory and Clinical Medicine, 85(2): 337–341. Zhang C., Jin Y., Yu Y., Xiang J. and Li F. 2021. Cadmium-induced oxidative stress, metabolic dysfunction and metal bioaccumulation in adult palaemonid shrimp Palaemon macrodactylus (Rathbun, 1902). Ecotoxicology and Environmental Safety, 208: 1–9 (111591). | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 913 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 177 |