پیوندهای مفید
آمار
| تعداد نشریات | 31 |
| تعداد شماره‌ها | 708 |
| تعداد مقالات | 6,666 |
| تعداد مشاهده مقاله | 9,206,340 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 6,318,089 |
امکان استفاده از برخی جدایههای ایرانی قارچ بیمارگر Akanthomyces برای کنترل میکروبی شپشک آردآلود پنبه Phenacoccus solenopsis | ||
| تحقیقات آفات گیاهی | ||
| مقاله 6، دوره 12، شماره 3، آذر 1401، صفحه 57-70 اصل مقاله (769.94 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22124/iprj.2022.6016 | ||
| نویسندگان | ||
| ناهید للری سردارآبادی؛ فاطمه یاراحمدی* ؛ نوشین زندی سوهانی؛ محمدحامد قدوم پاریزی‌پور؛ علی رجب‌پور | ||
| گروه گیاه‌پزشکی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، ملاثانی، شهرستان باوی، خوزستان، ایران | ||
| چکیده | ||
| شپشک آردآلود پنبه (Hemiptera: Pseudococcidae)Tinsely Phenacoccus solenopsis یکی از آفات مهم بسیاری از گیاهان در اکوسیستمهای کشاورزی و فضاهای سبز شهری میباشد. در این مطالعه، امکان به کارگیری سه جدایه ایرانی از قارچ Akanthomyces lecanii (جدایههای PAL6، PAL7 و PAL8) و یک جدایه ایرانی از گونه A. muscarius (جدایه GAM5) در کنترل میکروبی این آفت در شرایط گلخانهای و روی گیاه حسن یوسف (به عنوان میزبان گیاهی شپشک) مورد ارزیابی قرار گرفت. برای این منظور، گیاهان آلوده به پنج پورههای سن آخر شپشک توسط غلظتهای مختلف (104، 105، 106، 107 و 108 کنیدی در هر میلیلیتر) هر جدایه تیمار شده و میزان مرگ و میر شپشکها تا هشت روز و به صورت روزانه ثبت شد. میزان مرگ و میر از 3/14 درصد (در جدایه PAL7) تا 79/1 درصد (در جدایه PAL8) متغیر بود. بیشترین میزان مرگ و میر در غلظت 108 کنیدی در هر میلیلیتر بیمارگرهای مزبور دیده شد. بیشترین مرگ و میر ناشی از بیماریزایی جدایهها در روز ششم پس از تیمار ثبت شد. به طور کلی، سوسپانسیون کنیدی جدایه PAL7 قارچ A. lecanii با غلظت 108 کنیدی در هر میلیلیتر بهترین گزینه بین بیمارگرهای مورد مطالعه برای کنترل میکروبی شپشک آردآلود پنبه بود که در شش روز پس از تیمار موجب 17/56 درصد مرگ و میر در جمعیت این آفت شد. از نتایج این تحقیق میتوان برای توسعه کنترل میکروبی شپشک آرد آلود پنبه به ویژه در محیطهای گلخانهای استفاده نمود. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| آفات گلخانهای؛ بیماریزایی؛ کنترل میکروبی؛ مدیریت تلفیقی آفات | ||
| مراجع | ||
|
Abbot, W. S. 1925. A method of computing the effectiveness of an insecticide. Journal of Economic Entomology 18: 265–267.
Aini, A. N., Mongkolsamrit, S., Wijanarka, W., Thanakitpipattana, D., Luangsa-Ard, J. J. and Budiharjo, A. 2020. Diversity of Akanthomyces on moths (Lepidoptera) in Thailand. MycoKeys 71: 1.
Amnuaykanjanasin, A., Jirakkakul, J., Panyasiri, C., Panyarakkit, P., Nounurai, P., Chantasingh, D., Eurwilaichitr, L., Cheevadhanarak, S. and Tanticharoen, M. 2012. Infection and colonization of tissues of the aphid Myzus persicae and cassava mealybug Phenacoccus manihoti by the fungus Beauveria bassiana. BioControl 58 (3), 319–330.
Broumandnia, F. and Rajabpour, A. 2020. Efficacies of some isolates of Lecanicillium lecanii to control Tribolium castaneum (Col., Tenebrionidae). Journal of Plant Diseases and Protection 127(5): 625-631.
Broumandnia, F., Rajabpour, A., Parizipour, M. H. G. and Yarahmadi, F. 2021. Morphological and molecular identification of four isolates of the entomopathogenic fungal genus Akanthomyces and their effects against Bemisia tabaci on cucumber. Bulletin of Entomological Research 111(5), 628-636.
Cuthbertson, A. G. and Walters, K. F. 2005. Pathogenicity of the entomopathogenic fungus, Lecanicillium muscarium, against the sweet potato whitefly Bemisia tabaci under laboratory and glasshouse conditions. Mycopathologia 160: 315–319.
Cuthbertson, A. G., Walters, K. F. and Northing, P. 2005. The susceptibility of immature stages of Bemisia tabaci to the entomopathogenic fungus Lecanicillium muscarium on tomato and verbena foliage. Mycopathologia 159(1): 23–29.
Effendi, H. 2012. Phenolic Compounds of Sponge-associated Fungi (Lecanicillium evansii). Microbiology Indonesia 6(3): 1-1.
Fan. Y., Sh. Zhang., N. Kruer and Keyhani, N. O. 2011. High-throughput insertion mutagenesis and functional screening in the entomopathogenic fungus Beauveria bassiana. Journal of Invertebrate Pathology 106(2): 274–279.
Goettel, M. S., Koike, M., Kim, J. J., Aiuchi, D., Shinya, R. and Brodeur, J. 2008. Potential of Lecanicillium spp. for management of insects, nematodes and plant diseases. Journal of Invertebrate Pathology 98 (3): 256-261.
Hayashi, N., Kobayashi, N., Cruz, C. V. and Fukuta, Y. 2009. Protocols for the sampling of diseased specimens and evaluation of blast disease in rice. JIRCAS Working Report 63: 17-33.
Kepler, R. M., Luangsa-ard, J. J., Hywel-Jones, N. L., Quandt, C. A., Sung, G. H., Rehner, S. A., Aime, M. C., Henkel, T. W., Sanjuan, T., Zare R., Chen, M. J., Li, Z. Z., Rossman, A. Y., Spatafora, J. W. and Shrestha, B. 2017. A phylogenetic-based nomenclature for Cordycipitaceae (Hypocreales). IMA Fungus 8(2): 335–353.
Keppanan, R., Sivaperumal, S., Hussain, M., Bamisile, B. S., Aguila, L. C. R., Qasim, M. and Krutmuang, P. 2019. Molecular characterization of pathogenesis involving the GAS 1 gene from Entomopathogenic fungus Lecanicillium lecanii and its virulence against the insect host Diaphorina citri. Pesticide Biochemistry and Physiology 157: 99-107.
Kim, J. J. 2007. Influence of Lecanicillium attenuatum on the development and reproduction of the cotton aphid, Aphis gossypii. BioControl 52(6): 789–799.
Kirk, P. M., Cannon, P. F., Minter, D. W., & Stalpers, J. A. (2008). Dictionary of the fungi .Wallingford. UK: CABI, 599.
Liu, W., Xie, Y., Xue, J., Gao, Y., Zhang, Y., Zhang, X. and Tan, J. 2009. Histopathological changes of Ceroplastes japonicus infected by Lecanicillium lecanii. Journal of Invertebrate Pathology 10: 96–105.
Liu, B., Lan., P. M., Kao., Y. M., Tzeng, T. and Feng, C. 2003. Production of chitinase from Verticillium lecanii F091 using submerged fermentation. Enzyme and Microbial Technology 33: 410–415.
Moghadam, M. and Bagheri, M. 2010. A new mealybug pest in the south of Iran, Phenacoccus solenopsis (Tinsley) (Hemiptera: Pseudococcidae). Journal of Entomological Society of Iran 30 (1): 67-69. (In Farsi with English abstract).
Mongkolsamrit, S., Noisripoom, W., Thanakitpipattana, D., Wuthikun, T., Spatafora, J. W. and Luangsa-ard, J. J. 2018 Disentangling cryptic species with isaria-like morphs in Cordycipitaceae. Mycologia 110(1): 230–257.
Mossadegh, M. S., Vafaei, Sh., Zarghami, S., Farsi, A., Sedighi Dehkordi, F., Fazelinejad, A., Esfandiari, M. and Alizadeh, M. S. 2012. The mealybug Phenacoccus solenopsis Tinsley (Sternorrhyncha: Coccoidea: Pseudococcidae) in Khuzestan and Kish island. Proceedings of the 20th Iranian Plant Protection Congress, Shiraz, Iran. P. 174. (In Farsi with English abstract).
Nawaz, M. and Freed, S. 2021. Pathogenicity of different isolates of entomopathogenic fungi on cotton mealybug, Phenaccocus solenopsis Tinsley. Pakistan Journal of Zoology 54(1): 1-8.
Nazar, M. Z., Freed, S., Hussain, S., Sumra, M. W., Shah, M. S. and Naeem, A. 2020. Characteristics of biochemical resistance mechanism of novel insecticides in Phenacoccus solenopsis Tinsley (Hemiptera: Pseudococcidae). Crop Protection 138: 105320.
Ortiz-Urquiza, A. and Keyhani, N. O. 2013. Action on the surface: entomopathogenic fungi versus the insect cuticle. Insects 4(3): 357–374.
Rajabpour, A. and Yarahmadi, F. 2012. Seasonal population dynamics, spatial distribution and parasitism of Aphis gossypii on Hibiscus rosa-chinensis in Khuzestan, Iran. Journal of Entomology 9(3): 163-170.
Ren, S. X., Ali, S., Huang, Z. and Wu, J. H. 2010. Lecanicillium muscarium as microbial insecticide against whitefly and its interaction with other natural enemies. Microbiology and Microbial Biotechnology 27: 339–348.
Roozdar, E., Habibpour, B., Mossadegh, M. S. and Mahmoodi Sourestani, M. 2019. Evaluation of biological effects of essential oils of 14 plants species against cotton mealybug, Phenacoccus solenopsis (Hem.: Pseudococcidae) under laboratory conditions. Plant Protection 42(3): 72-86.
Saddiq, B., Shad, S. A., Khan, H. A. A., Aslam, M., Ejaz, M. and Afzal, M. B. S. 2014. Resistance in the mealybug Phenacoccus solenopsis Tinsley (Homoptera: Pseudococcidae) in Pakistan to selected organophosphate and pyrethroid insecticides. Crop Protection 66: 29-33.
Sahito, H. A., Abro, G. H., Syed, T. S., Memon, S. A., Mal, B. and Kaleri, S. 2011. Screening of pesticides against cotton mealybug Phenacoccus solenopsis Tinsley and its natural enemies on cotton crop. International Research Journal of Biochemistry and Bioinformatics 1(9): 232-236.
Soltani, T., Yarahmadi, F., Rajabpour, A. and Ghoddom Parizi Pour, M. H. 2022. Pathogenicity of Iranian isolates of Akanthomyces lecanii and A. muscarius on the black bean aphid (Aphis fabae Scopoli). Plant Protection (Scientific Journal of Agriculture) 45(1): 19-28.
Sugimoto, M., Koike, M., Hiyama, N. and Nagao, H. 2003. Genetic, morphological, and virulence characterization of the entomopathogenic fungus Verticillium lecanii. Journal of Invertebrate Pathology 82 (3): 176-187.
Wang, X., Gong, X., Li, P., Lai, D. and Zhou, L. 2018. Structural diversity and biological activities of cyclic Depsipeptides from fungi. Molecules 23:169.
Wraight, S. P., Lopes, R. B. and Faria, M. 2017. Microbial control of mite and insect pests of greenhouse crops. In Lawrence A. L. (Eds). Microbial control of insect and mite pests. Academic Press. pp. 237-252. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 159 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 134 |
||