تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 738 |
تعداد مقالات | 6,941 |
تعداد مشاهده مقاله | 9,884,402 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 6,703,238 |
بررسی تاثیر مکمل غذایی پربیوتیک پودر قارچ صدفی (Pleurotus ostreatus) بر بیان ژنهای P450 و Hsp70 بافت کبد ماهی تیلاپیای نیل (Oreochromis niloticus) در مواجهه با سم کلرپیریفوس | ||
فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان | ||
دوره 10، شماره 1، خرداد 1401، صفحه 1-20 اصل مقاله (809.84 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22124/japb.2021.19455.1420 | ||
نویسندگان | ||
عاطفه ایری1؛ سید علی اکبر هدایتی* 2؛ حامد پاکنژاد3؛ طاهره باقری4؛ سید رضا خالقی1 | ||
1دانشجوی دکتری بومشناسی آبزیان، گروه تولید و بهرهبرداری آبزیان، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران | ||
2استاد گروه تولید و بهرهبرداری آبزیان، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران | ||
3دانشیار گروه تکثیر و پرورش آبزیان، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران | ||
4استادیار مرکز تحقیقات شیلاتی آبهای دور، موسسه تحقیقات شیلات ایران، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، چابهار، ایران | ||
چکیده | ||
افزایش ورود آفت کشهایی مانند سم کلرپیریفوس در اکوسیستمهای آبی میتواند سبب ایجاد آسیبهای زیانباری بر آبزیان شود. این پژوهش با هدف بررسی تاثیر مکمل غذایی پربیوتیک پودر قارچ خوراکی Pleurotus ostreatus بر بیان نسبی ژنهای مرتبط با ایمنی (P450 و Hsp70) در بافت کبد بچه ماهی تیلاپیای نیل (Oreochromis niloticus) در مواجهه با سم کلرپیریفوس صورت گرفت. در این بررسی 120 قطعه بچه ماهی تیلاپیای نیل با میانگین وزن 4/0±20 گرم در چهار تیمار و سه تکرار تقسیم شدند و با جیرههای حاوی 0 (شاهد)، 05/0، 1/0 و 2/0درصد قارچ به مدت 42 روز تغذیه شدند. پس از پایان دوره تغذیه، تمام تیمارها به مدت 14 روز در مواجهه با غلظت تحت کشنده سم کلرپیریفوس قرار گرفتند. نمونهبرداری از بافت کبد برای ارزیابی بیان نسبی ژنهای یاد شده در آخرین روز دوره تغذیه با قارچ و در چهاردهمین روز مواجهه با سم کلرپیریفوس صورت گرفت. میزان بیان نسبی P450 در تیمارهای 2/0 و 1/0 افزایش قابل توجهی داشت ولی تیمارهای 05/0 و 1/0 بعد از مواجهه با سم تفاوت معنیداری نسبت به گروه شاهد نداشتند (05/0<P). بیان ژن Hsp70 در تیمارهای تغذیه شده با مکمل غذایی قبل و بعد از مواجهه با سم تفاوت معنیداری داشت (05/0P<)، به طوری که در تیمار 2/0 افزایش یافت. ولی در تیمار 05/0 تفاوت معنیداری نسبت به تیمار شاهد نداشت (05/0<P). نتایج این مطالعه نشان دهنده اثرات مثبت مکمل غذایی پربیوتیک Pleurotus ostreatus بر بیان نسبی ژنهای Hsp70 و P450 در بچه ماهی تیلاپیا نیل و تقویت دستگاه ایمنی آن در مواجهه با آلایندهها و مواد تنشزا چون کلرپیریفوس است. | ||
کلیدواژهها | ||
آفتکش؛ بیان ژن؛ ماهی تیلاپیا نیل؛ کلرپیریفوس؛ پربیوتیک | ||
مراجع | ||
جافرنوده ع. 1395. بررسی خواص سینرژیستی برخی اسیدهای آلی با باکتری لاکتوباسیلوس کازئی (Lactobacillus casei) در پرورش بچه ماهیان انگشت قد قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss). رساله دکتری، دانشگاه ارومیه. 150ص. حسننتاج نیازی ا. ایمانپور م.ر. هدایتی س.ع.ا. 1393. تعیین سمیت کشنده آفتکش کلرپیریفوس در ماهی کاراس طلایی (Carassius auratus) و مقایسه میزان سمیت آن با سایر سموم ارگانوفسفره. مجله بهرهبرداری و پرورش آبزیان، 3(4): 12-1. Aida F.M.N.A., Shuhaimi M., Yazid M. and Maaruf A.G. 2009. Mushroom as a potential source of prebiotics: A review. Trends in Food Science and Technology, 20(11-12): 567–575. Benedetto A., Brizio P., Squadrone S., Scanzio T., Righetti M., Gasco L., Prearo M.C. and Abete M.C. 2016. Oxidative stress related to chlorpyrifos exposure in rainbow trout: Acute and medium term effects on genetic biomarkers. Pesticide Biochemistry and Physiology, 129: 63–69. Bricknell I. and Dalmo R.A. 2005. The use of immunostimulants in fish larval aquaculture. Fish and Shellfish Immunology, 19(5): 457–472. Castano A., Bols N.C., Braunbeck T., Dierick P., Halder M., Isomaa B., Kawahara K., Lee L.E.J., Mthersill C., Part P., Repetto G., Sintes J.R., Rufli H., Smith R. and Eisler R. 1986. Diazinon hazards to fish, wildlife, and invertebrates: A synoptic review. U.S. Fish and Wildlife Service, 85: 1–38. Dawood M.A., El-Shamaa I.S., Abdel-Razik N.I., Elkomy A.H., Gewaily M.S., Abdo S.E., Soliman A.A., Paray B.A. and Abdelkhalek N. 2020a. The effect of mannanoligosaccharide on the growth performance, histopathology, and the expression of immune and antioxidative related genes in Nile tilapia reared under chlorpyrifos ambient toxicity. Fish and Shellfish Immunology, 103: 421–429. Dawood M.A., Eweedah N.M., El-Sharawy M.E., Awad S.S., Van Doan H. and Paray B.A. 2020b. Dietary white button mushroom improved the growth, immunity, antioxidative status and resistance against heat stress in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture, 523: 1–9 (735229). Fu Y., Li M., Liu C., Qu J.P., Zhu W.J., Xing H.J. and Li S. 2013. Effect of atrazine and chlorpyrifos exposure on cytochrome P450 contents and enzyme activities in common carp gills. Ecotoxicology and Environmental Safety, 94: 28–36. Gibson G.R., Probert H.M., Van Loo J., Rastall R.A. and Roberfroid M.B. 2004. Dietary modulation of the human colonic microbiota: Updating the concept of prebiotics. Nutrition Research Reviews, 17(2): 259–275. Hoffman U. and Papendrof T. 2006. Organophosphate poisonings with parathion and dimethoate. Intensive Care Medicine, 32: 464–468. Hoseinifar S.H., Mirvaghefi A., Merrifield D.L., Amiri B.M., Yelghi S. and Bastami K.D. 2011. The study of some haematological and serum biochemical parameters of juvenile beluga (Huso huso) fed oligofructose. Fish Physiology and Biochemistry, 37(1): 91–96. Huang G.Y., Ying G.G., Liang Y.Q., Liu S.S. and Liu U.S. 2014. Expression patterns of metallothionein, cytochrome P4501A and vitellogeningenesin western mosquitofish (Gambusia affinis) in response to heavy metals. Ecotoxicology and Environmental Safety, 105: 97–102. Hyne R.V. and Maher W.A. 2003. Macroinvertebrate biomarkers: Links to toxicosis and changes in populations or communities. Ecotoxicology and Environmental Safety, 54: 366–374. Ihsan T., Edwin T. and Anggraeni W. 2018. Behavioral responses of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) by sublethal exposure to chlorpyrifos: A case study in Twin Lakes of West Sumatra. Environmental Health Engineering and Management Journal, 5(4): 205–210. Iwama G.K., Vijayan M.M., Forsyth R.B. and Ackerman P.A. 1999. Heat shock proteins and physiological stress in fish. American Zoologist, 39(6): 901–909. Larionov A., Krause A. and Miller W. 2005. A standard curve based method for relative real time PCR data processing. BMC Bioinformatics, 6(1): 1–16. Liu T., Zhang Z., Chen D., Wang L., Yao H., Zhao F., Xing H. and Xu S. 2013. Effect of atrazine and chlorpyrifos exposure on heat shock protein response in the brain of common carp (Cyprinus carpio L.). Pesticide Biochemistry and Physiology, 107(2): 277–283. Livak K.J. and Schmittgen T.D. 2001. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2−ΔΔCT method. methods, 25(4): 402–408. Mokhbatly A.A.A., Assar D.H., Ghazy E.W., Elbialy Z., Rizk S.A., Omar A.A. and Dawood M.A. 2020. The protective role of spirulina and β-glucan in African catfish (Clarias gariepinus) against chronic toxicity of chlorpyrifos: Hemato-biochemistry, histopathology, and oxidative stress traits. Environmental Science and Pollution Research, 27(25): 31636–31651. Norman A. and Henry H. 2015. Hormones. Steroid Hormones: Chemistry, Biosynthesis and Metabolism. Elsevier, USA. 411P. Ramakers C., Ruijter J.M., Deprez R.H. and Moorman A.F. 2003. Assumption-free analysis of quantitative real-time polymerase chain reaction (PCR) data. Neurosci. Lett. 339, 62–66 Ringo E., Olsen R.E., Gifstad T.O., Dalmo R.A., Amlund H., Hemre G.I. and Bakke A.M. 2010. Prebiotics in aquaculture: A review. Aquaculture Nutrition, 16(2): 117–136. Schrezenmeir J. and De Vres, M. 2001. Probiotics, prebiotics, and synbiotics-approaching a definition. The American Journal of Clinical Nutrition, 73: 361–364. Sevik S., Aktas M., Dogan H. and Kocak S. 2013. Mushroom drying with solar assisted heat pump system. Energy Conversion and Management, 72: 171–178. Shayeghi M., Khobdel M., Bagheri F. and Abtai M. 2008. Azynphosmethyl and diazinon residues in Qarasu River and Gorganrood in Golestan Province. Journal of Public Health and Health Research Institute, 6: 75–82. Softeland L., Holen E. and Olsvik P.A. 2010. Toxicological application of primary hepatocyte cellcultures of Atlantic cod (Gadus morhua), effects of BNF, PCDD and Cd. Comparative Biochemistry and Physiology, 151: 401–411. Vale J.A. 1998. Toxicokinetic and toxicodynamic aspects of organophosphorus (OP) insecticide poisoning. Toxicology Letters, 102: 649–652. Van Doan H., Hoseinifar S.H., Dawood M.A., Chitmanat C. and Tayyamath K. 2017. Effects of Cordyceps militaris spent mushroom substrate and Lactobacillus plantarum on mucosal, serum immunology and growth performance of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Fish and Shellfish Immunology, 70: 87–94. Van Loo J. and Gibson G. 2006. Inulin-type fructans as prebiotics. P: 57–100. In: Rastall B. and Gibson G. (Eds.). Prebiotics: Development and Application, Wiley, UK. Wasser S.P. 2002. Medicinal mushrooms as a source of antitumor and immunomodulating polysaccharides. Applied Microbiology and Biotechnology, 60(3): 258–274. Welker T.L., Lim C., Yildirim-Aksoy M. and Klesius P.H. 2011. Effects of dietary supplementation of a purified nucleotide mixture on immune function and disease and stress resistance in channel catfish, Ictalurus punctatus. Aquaculture Research, 42: 1878–1889. Xing H., Li S., Wang X., Gao X., Xu S. and Wang X. 2013. Effects of atrazine and chlorpyrifos on the mRNA levels of HSP70 and HSC70 in the liver, brain, kidney and gill of common carp (Cyprinus carpio L.). Chemosphere, 90(3): 910–916. Xing H., Li S., Wang Z., Gao X., Xu S. and Wang X. 2012. Histopathological changes and antioxidant response in brain and kidney of common carp exposed to atrazine and chlorpyrifos. Chemosphere, 88(4): 377–383. Xing H., Zhang Z., Yao H., Liu T., Wang L., Xu S. and Li S. 2014. Effects of atrazine and chlorpyrifos on cytochrome P450 in common carp liver. Chemosphere, 104: 244–250. Yousefi S. and Hoseinifar S.H. 2018. Protective effects of prebiotic in zebrafish, Danio rerio, under experimental exposure to Chlorpyrifos. International Journal of Aquatic Biology, 6(2): 49–54. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 922 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 455 |