تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 748 |
تعداد مقالات | 7,108 |
تعداد مشاهده مقاله | 10,240,125 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 6,897,829 |
تعیین کیسپپتین ماهی سفید دریای خزر و تاثیر آن بر هورمونهای تولیدمثلی | ||
فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان | ||
دوره 9، شماره 4، اسفند 1400، صفحه 1-20 اصل مقاله (1017.94 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22124/japb.2021.21203.1449 | ||
نویسندگان | ||
هانیه ربوطی1؛ سید محسن اصغری* 2، 3؛ ریحانه سریری4؛ بهروز حیدری2، 5؛ سعید بلالایی6 | ||
1دانشجوی دکتری بیوشیمی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه گیلان، رشت، ایران | ||
2دانشیار گروه زیستشناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه گیلان، رشت، ایران | ||
3دانشیار گروه بیوشیمی و بیوفیزیک، مرکز تحقیقات بیوشیمی بیوفیزیک، دانشگاه تهران، تهران، ایران | ||
4استاد گروه زیستشناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه گیلان، رشت، ایران | ||
5دانشیار گروه علوم دریایی پژوهشکده حوضه آبی دریای خزر، دانشگاه گیلان، رشت، ایران | ||
6استاد گروه شیمی دارویی، مرکز تحقیقات شیمی سنتز، دانشگاه صنعتی خواجه نصیر الدین طوسی، تهران، ایران | ||
چکیده | ||
ماهی سفید دریای خزر (Rutilus kutum) از نظر تجاری و غذایی مهمترین ماهی استخوانی حوضه جنوبی دریای خزر است که برای جلوگیری از انقراض این گونه با ارزش از تولیدمثل القایی برای همزمانسازی و افزایش میزان هماوری در شرایط پرورشی استفاده میشود. مطالعات پیشین نشان داد که کیسپپتین که یک پروتئین فوق محرک در محور غدد ترشح کننده هورمونهای جنسی است، منجر به بلوغ جنسی و گامتوژنز میشود، اما تاکنون توالی کیسپپتین 1 و 2 ماهی سفید مشخص نشده است و متناظرا قابلیت این پپتید از پروتئین (Kiss1) در تولیدمثل مورد بررسی قرار نگرفته است. در مطالعه حاضر توالی کیسپپتین 10 در ماهی سفید به روش CLUSTALW و با طراحی آغازگر از توالی Kiss1 ماهیهای همخانواده ماهی سفید تعیین شد. برای دستیابی به بهترین غلظت پپتید Kiss1 از غلظتهای 5، 25، 50 و 100 میکروگرم در کیلوگرم استفاده شد و غلظت 17-α هیدروکسی پروژسترون و 17-β استرادیول پلاسما مورد بررسی قرار گرفت. نتایج این مطالعه نشان داد که کیسپپتین 10 سنتزی با غلظت بهینه 100 میکروگرم در کیلوگرم میتواند به عنوان گزینه مناسب برای القا تخمریزی در ماهی سفید معرفی شود. | ||
کلیدواژهها | ||
کیسپپتین؛ هورمون سنتتیک؛ ماهی سفید؛ تولیدمثل | ||
مراجع | ||
Abdurakhmanov Y.A. 1962. Fish of freshwater bodies of Azerbaijan. Academy of Sciences of Azerbaijan SSR, USSR. P: 89–96. Akhondian M., Savari A., Salamat N., Movahdynya A.A. and Salari M.A. 2015. Changes in plasma level of steroid hormones (estradiol 17β, 17α20β hydroxy progesteron and cortisol) and electrolytes, during different stages of reproductive cycle in Rutilus rutilus caspicus from Bandar Torkaman (South of Caspian Sea). Oceanography, 6(21): 117–126. Al-Khalaifah H.S., Amer S.A., Al-Sadek D.M.M., Khalil A.A., Zaki E.M. and El-Araby D.A. 2020. Optimizing the growth, health, reproductive performance, and gonadal histology of broodstock fantail goldfish (Carassius auratus, L.) by dietary cacao bean meal. Animals (Basel), 10(10): 1–22 (1808). Apter D., Butzow T.L., Laughlin G.A. and Yen S.S. 1993. Gonadotropin- releasing hormone pulse generator activity during pubertal transition in girls: Pulsatile and diurnal patterns of circulating gonadotropins. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism, 76: 940–949. Asimakopoulos B. 2012. Hypothalamus-pituitary-gonadal axis: It is time for revision. Human Genetics and Embryology, 2: 1–3. Clarke I.J. and Cummins J.T. 1982. The temporal relationship between gonadotropin releasing hormone (GnRH) and luteinizing hormone (LH) secretion in ovariectomized ewes. Endocrinology, 111: 1737–1739. Coad B.W. and Vilenkin B.Y. 2004. Co-occurrence and zoogeography of the freshwater fishes of Iran. Zoology in the Middle East, 31: 53–61. Corradi P.F., Corradi R.B. and Greene L.W. 2016. Physiology of the hypothalamic pituitary gonadal axis in the male. Urologic Clinics of North America, 43: 151–162. De Roux N., Genin E., Carel J.C., Matsuda F., Chaussain J.L. and Milgrom E. 2003. Hypogonadotropic hypogonadism due to loss of function of the KiSS1-derived peptide receptor GPR54. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 100: 10972–10976. Faheem M., Jahan N., Khaliq S. and Lone K.P. 2019. Modulation of brain kisspeptin expression after bisphenol-A exposure in a teleost fish, Catla catla. Fish Physiology and Biochemistry, 45(1): 33–42. Freeman M.E. 1994. The neuroendocrine control of the ovarian cycle of the rat. P: 613–658. In: Knobil E. and Neill J.D. (Eds.). The Physiology of Reproduction. Raven Press Ltd, USA. Goodman R.L. 1994. Neuroendocrine control of the ovine estrous cycle. P: 659–710. In: Knobil E., Neill J.D. (Eds.). The Physiology of Reproduction. Raven Press Ltd, USA. Goodman R.L. and Inskeep E.K. 2006. Neuroendocrine control of the ovarian cycle of the sheep. 2247–2389. In: Neill J.D. (Ed.). Physiology of Reproduction. Academic Press, USA. Gottsch M.L., Cunningham M.J., Smith J.T., Popa S.M., Acohido B.V., Crowley W.F., Seminara S., Clifton D.K. and Steiner R.A. 2004. A role for kisspeptins in the regulation of gonadotropin secretion in the mouse. Endocrinology, 145(9): 4073–4077. Haniffa M.A., Merlin T. and Shaik Mohamed J. 2000. Induced spawning of the striped murrel Channa striatus using pituitary extracts, human chorionic gonadotropon, luteinizing hormone releasing hormone analogue, and ovaprim. Acta Icthyologica et Piscatorial, 30(1): 53–60. Heyrati F.P., Mostafavi H., Toloee H. and Dorafshan S. 2006. Induced spawning of kutum, Rutilus frisii kutum using (D-Ala6, Pro9-NEt) GnRHa combined with domperidone. Aquaculture, 265: 288–293. Kiabi B.H., Abdoli A. and Naderi M. 1999. Status of fish fauna in the south Caspian basin of Iran. Zoology in the Middle East, 18: 57–65. Kotani M., Detheux M., Van Den Bogaerde A., Communi D., Van Der Winden J.M., Le P.E., Brezillon S., Tyldesley R., Suarez-Huerta N., Vandeput F., Blanpain C., Schiffmann S.N., Vassart G. and Parmentier M. 2001. The metastasis suppressor gene KiSS-1 encodes kisspeptins, the natural ligands of the orphan G protein-coupled receptor GPR54. Journal of Biological Chemistry, 276(37): 34631–34636. Lee J.H., Miele M.E., Hicks D.J., Phillips K.K., Trent J.M., Weissman B.E. and Welch D.R. 1996. KiSS-1, a novel human malignant melanoma metastasis-suppressor gene. Journal of the National Cancer Institute, 88 (23): 1731–1737. Lee D.K., Nguyen T., O'Neill G.P., Cheng R., Liu Y., Howard A.D., Coulombe N., Tan C.P., Tang-Nguyen A.T., George S.R. and O'Dowd B.F. 1999. Discovery of a receptor related to the galanin receptors. Federation of European Biochemical Societies letters, 446(1): 103–107. Lee P.Y., Costumbrado J., Hsu C.Y. and Kim Y.H. 2012. Agarose gel electrophoresis for the separation of DNA fragments. Journal of Visualized Experiments, 62: 1–5 (3923). Li S., Zhang Y., Liu Y., Huang X., Huang W., Lu D., Zhu P., Shi Y., Cheng C.H. and Liu X. 2009. Structural and functional multiplicity of the kisspeptin/GPR54 system in goldfish (Carassius auratus). Journal of Endocrinology, 201: 407–418. Lorenz T.C. 2012. Polymerase chain reaction: Basic protocol plus troubleshooting and optimization strategies. Journal of Visualized Experiments, 63: 1–15 (e3998). Mitani Y., Kanda S., Akazome Y., Zempo B. and Oka Y. 2010. Hypothalamic Kiss1 but not Kiss2 neurons are involved in estrogen feedback in medaka (Oryzia slatipes). Endocrinology, 151(4): 1751–1759. Moles G., Gomez A., Carrillo M. and Zanuy S. 2012. Development of a homologous enzyme linked immunosorbent assay for European sea bass FSH. Reproductive cycle plasma levels in both sexes and in yearling precocious and non-precocious males. General and Comparative Endocrinology, 176(1): 70–78. Moles G., Gomez A., Rocha A., Carrillo M. and Zanuy S. 2008. Purification and characterization of follicle-stimulating hormone from pituitary glands of sea bass (Dicentrarchus labrax). General and Comparative Endocrinology, 158: 68–76. Muir A.I., Chamberlain L., Elshourbagy N.A., Michalovich D., Moore D.J., Calamari A., Szekeres P.G., Sarau H.M., Chambers J.K., Murdock P., Steplewski K., Shabon U., Miller J.E., Middleton S.E., Darker J.G., Larminie C.G.C., Wilson S., Bergsma D.J., Emson P., Faull R., Philpott K.L. and Harrison D.C. 2001. AXOR12, a novel human G protein-coupled receptor, activated by the peptide KiSS-1. Journal of Biological Chemistry, 276: 28969–28975. Mylonas C.C., Fostier A. and Zanuy S. 2010. Broodstock management and hormonal manipulations of fish reproduction. General and Comparative Endocrinology, 165(3): 516–534. Nash J.P., Cuisset-Davail B., Bhattacharyya S., Suter H.C., Menn F. and Kime D.E. 2000. An enzyme linked immunosorbent assay (ELISA) for testosterone, estradiol, and 17, 20- dihydroxy-4-pregnen-3-one using acetylcholinesterase as tracer: Application to measurement of diel patterns in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish Physiology and Biochemistry, 22: 355–363. Niida A., Wang Z., Tomita K., Oishi S., Tamamura H., Otaka A., Navenot J.M., Broach J.R., Peiper S.C. and Fujii N. 2006. Design and synthesis of downsized metastin (45-54) analogs with maintenance of high KISS1RA agonistic activity. Bioorganic and Medicinal Chemistry Letters, 16(1): 134–137. Ohtaki T., Shintani Y., Honda S., Matsumoto H., Hori A., Kanehashi K., Terao Y., Kumano S., Takatsu Y., Masuda Y., Ishibashi Y., Watanabe T., Asada M., Yamada T., Suenaga M., Kitada C., Usuki S., Kurokawa T., Onda H., Nishimura O. and Fujino M. 2001. Metastasis suppressor gene KiSS-1 encodes peptide ligand of a G-protein-coupled receptor. Nature, 411: 613–617. Ojeda S.R., Lomniczi A., Mastronardi C., Heger S., Roth C. and Parent A.S. 2006. Minireview: the neuroendocrine regulation of puberty: Is the time ripe for a systems biology approach. Endocrinology, 147: 1166–1174. Poortenaar C., Hooker S. and Sharp N. 2001. Assessment of yellowtail kingfish (Seriola lalandi lalandi) reproductive physiology, as a basis for aquaculture development. Aquaculture, 201: 271–286. Rodriguez L., Begtashi I., Zanuy S. and Carrillo M. 2000. Development and validation of an enzyme immunoassay for testosterone: Effects of photoperiod on plasma testosterone levels and gonadal development in male sea bass (Dicentrarchus labrax, L.) at puberty. Fish Physiology and Biochemistry, 23: 141–150. Rodriguez L., Begtashi I., Zanuy S., Shaw M. and Carrillo M. 2001. Changes in plasma levels of reproductive hormones during first sexual maturation in European male sea bass (Dicentrarchus labrax L.) under artificial day lengths. Aquaculture, 202: 235–248. Saridhar S., Vijayakumar C. and Haniffa M.A. 1998. Induced spawning and establishment of captive population for an endangered fish, Ompok bimaculatus in India. Current Science, 75(10): 1066–1068. Seminara S.B., Messager S., Chatzidaki E.E., Thresher R.R., Acierno Jr J.S., Shagoury J.K., Bo-Abbas Y., Kuohung W., Schwinof K.M., Hendrick A.G., Zahn D., Dixon J., Kaiser U.B., Slaugenhaupt S.A., Gusella J.F., O’Rahilly S., Carlton M.B., Crowley Jr W.F., Aparicio S.A. and Colledge W.H. 2003. The GPR54 gene as a regulator of puberty. The New England Journal of Medicine, 349: 1614–1627. Sewald N. and Jakubke H.D. 2002. Peptides: Chemistry and Biology. Wiley-VCH, German. 594P. Shahab M., Mastronardi C., Seminara S.B., Crowley W.F., Ojeda S.R. and Plant T.M. 2005. Increased hypothalamic GPR54 signaling: A potential mechanism for initiation of puberty in primates. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 102(6): 2129–2134. Simerly R.B. 1998. Organization and regulation of sexually dimorphic neuroendocrine pathways. Behavioural Brain Research, 92: 195–203. Walker J.J., Terry J.R., Tsaneva-Atanasova K., Armstrong S.P., McArdle C.A. and Lightman S.L. 2010. Encoding and decoding mechanisms of pulsatile hormone secretion. Journal of Neuroendocrinology, 22: 1226–1238. Zhao Y., Lin M.C.A., Mock A., Yang M. and Wayne N.L. 2014. Kisspeptins modulate the biology of multiple populations of gonadotropin-releasing hormone neurons during embryogenesis and adulthood in zebrafish (Danio rerio). PLOS One 9(8): 1–11 (e104330). Zonneveld N., Rustidja Viveen W.J.A.R. and Mudana W. 1988. Induced spawning and egg incubation of the Asian catfish, Clarias batrachus. Aquaculture, 74: 41–47. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,101 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,060 |