تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 743 |
تعداد مقالات | 7,073 |
تعداد مشاهده مقاله | 10,149,536 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 6,857,509 |
تغییرات یونوسیتهای پوست لارو سوف سفید دریای خزر (Sander lucioperca) در مواجهه با شوریهای مختلف | ||
فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان | ||
دوره 9، شماره 3، آذر 1400، صفحه 149-169 اصل مقاله (765.73 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22124/japb.2021.17248.1390 | ||
نویسندگان | ||
محدثه احمدنژاد* 1؛ شهربانو عریان* 2؛ محمود بهمنی* 3؛ محمد صیاد بورانی* 4 | ||
1استادیار پژوهشکده آبزی پروری آبهای داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران | ||
2استاد گروه زیستشناسی، دانشکده زیستشناسی، دانشگاه خوارزمی، تهران، ایران | ||
3استاد موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران | ||
4دانشیار پژوهشکده آبزی پروری آبهای داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران | ||
چکیده | ||
هدف از مطالعه حاضر، تعیین توانایی تنظیم اسمزی لاروهای سوف سفید در دو مرحله قبل (a) و بعد از جذب کیسه زرده (b) بود. دو گروه لاروی به مدت 96 ساعت، در معرض آب شیرین (شوری کمتر از نیم در هزار)، شرایط مصبی (شوری 7 در هزار) و آب دریای خزر (شوری 12 در هزار) قرار گرفتند. درصد بقای لاروها، تعداد و اندازه یونوسیتهای پوست و درصد سطح آنها با استفاده از بافتشناسی کلاسیک همراه با رنگآمیزی ائوزین- هماتوکسیلین و ایمونوهیستوشیمی از طریق مکانیابی آنزیم Na+, K+-ATPase مورد بررسی قرار گرفت. میزان بقا در آب شیرین، برای هر دو گروه 97 درصد بود. 86 درصد از لاروهای گروه a در شوری 7 در هزار زنده ماندند. در حالی که در شوری 12 در هزار نرخ بقای آنها صفر شد. 97 درصد از لاروهای گروه b در شوری 7 در هزار و 20 درصد از آنها در شوری 12 در هزار زنده ماندند. اندازه سلولهای کلراید پوست در مواجهه با شوری تغییری نکرد. در انتهای آزمون، تعداد و درصد سطح سلولهای کلراید موجود در پوست در گروه a در شوری 7 و در گروه b در شوری 12 در هزار به طور معنیداری افزایش یافت (05/0>P). نتایج نشان داد که در لارو سوف سفید دریای خزر، با افزایش رشد، نمو و تکامل بدن، عملکرد سلولهای کلراید پوست در تنظیم اسمزی افزایش یافت و توانست در زندهماندن لاروها در مواجهه با شوری به گونهای عمل کند که میزان بقا در مرحله پس از جذب کیسه زرده در مواجهه با شوری بیشتر از مرحله قبل از جذب کیسه زرده باشد. | ||
کلیدواژهها | ||
دریای خزر؛ سوف سفید؛ تنظیم اسمزی؛ ایمونوهیستوشیمی؛ سدیم- پتاسیم ATPase | ||
مراجع | ||
احمدنژاد م.، عریان ش.، بهمنی م. و صیاد بورانی م. 1393. روند ظهور یونوسیتهای آبشش و پوست در مراحل اولیه رشد و نمو لارو لارو سوف سفید دریای خزر (Sander lucioperca). فصلنامه علمی پژوهشی فیزیولوژی و تکوین جانوری، 7(2): 48-39. عبدلی ا. 1378. ماهیان آبهای داخلی ایران. انتشارات موزه طبیعت و حیات وحش ایران. 377ص. Ayson F.G., Kaneko T., Hasegawa S. and Hirano T. 1994. Development of mitochondrian rich cells in the yolk sac membrane of embryos and larvae of Tilapia (Oreochromis mossambicus) in fresh water and sea water. Journal of Experimental Zoology, 270: 129–135. Bancroft J.D. and Stevens A. 1977. Theory and Practice of Histological Techniques. Churchill Livingstone, UK. 436P. Bodinier C., Sucre E., Lecurieux-Belfond L., Blondeau-Bidet E. and Charmantier G. 2010. Ontogeny of osmoregulation and salinity tolerance in the gilthead sea bream Sparus aurata. Comparative Biochemistry and Physiology (A), 157: 220–228. Craig J.F. 2000. Percid fishes: Systematic, Ecology and Exploitation. Blackwell Science, USA. 352P. Evans T.G. 2010. Co-ordination of osmotic stress responses through osmosensing and signal transduction events in fishes. Journal of Fish Biology, 76: 1903–1925. Ghanizadeh Kazerouni E. and Khodabandeh S. 2011. Ionocyte immunolocalization and the effects of ultraviolet radiation on their abundance and distribution in the alenins of Caspian Sea salmon, Salmo trutta caspius. Cell Journal (Yakhteh), 13(1): 45–54. Hamza N., Mhetli M., Khemis I.B., Cahu C. and Kestemont P. 2008. Effect of dietary phospholipid levels on performance, enzyme activities and fatty acid composition of pikeperch (Sander lucioperca) larvae. Aquaculture, 275: 274–282. Hiroi J., Kaneko T., Seikai T. and Tanaka M. 1998. Developmental sequence of chloride cells in the body skin and gills of Japanese flounder Paralichthyys olivaceus larvae. Zoological Science, 15: 455–460. Hiroi J., McCormick S.D., Ohtani-Kaneko R. and Kaneko T. 2005. Functional classification of mitochondrion rich cells in euryhaline Mozambique tilapia Oreochromis mossambicus embryos by means of triple immunofluorescence staining for Na+,K+-ATPase, cotransporters and CFTR anion channel. Journal of Experimental Biology, 208: 2023–2036. Hirose S., Kaneko T., Naito N. and Takei Y. 2003. Molecular biology of major components of chloride cells. Comparative Biochemistry and Physiology, 136: 593–620. Hwang P.P. 1990. Salinity effects on development of chloride cells in the larvae of ayu (Plecoglossus altivelis). Marine Biology, 107: 1–7. Hwang P.P., Sun C.M. and Woo S.M. 1989. Changes of plasma osmolarity, chloride concentration and gill Na+-K+-ATPase activity in tilapia Oreochromis mossambicus during seawater acclimation. Marin Biology, 100: 295–233. Kaneko T. and Hiroi J. 2008. Osmo and ionoregulation. P: 163–183. In: Finn R.N. and Kapoor B.G. (Eds.). Fish Larval Physiology. Science Publishers, USA. Kaneko T., Shiraishi K., Katoh F., Hasegawa S. and Hiroi J. 2002. Chloride cells during early life stages of fish and their functional differentiation. Fisheries Science, 68: 1–9. Kaneko T., Watanabe S. and Kyung Min L. 2008. Functional morphology of mitochondrion- rich cells in euryhaline and stenohaline teleosts. Aqua Bioscience Monographs, 1(1): 1–62. Khodabandeh S., Charmantier G. and Chramantier-Daures M. 2006. Immunolocalization of Na+,K+-ATPase in osmoregulatory organs during the embryonic and post-embryonic development of the lobster, Homarus gammarus. Journal of Crustacean Biology, 26(4): 515–523. Khodabandeh S., Mosafer S. and Khoshnood Z. 2009a. Effect of cortisol and salinity acclimation on Na+,K+,2Cl- cotransporter gene expression and Na+,K+-ATPase activity in gill of Persian sturgeon Acipenser persicus fry. Scietia Marina, 73: 111–116. Khodabandeh S., Shahriari M. and Abtahi B. 2009b. Changes in chloride cells abundance Na+,K+-ATPase immunolocalization and activity in gills of golden grey mullet, Liza aurata fry during adaptation to different salinities. Yakhteh Medical Journal, 11: 49–54. Lasker R. and Threadgold L.T. 1968. Chloride cells in the skin of the larval sardine. Experimental Cell Research, 52: 582–590. Lignot J.H., Nugroho susanto G., Charmantier-daures M. and Charamantier G. 2001. Immunolocalization of Na+,K+-ATPase in the branchial cavity during the early development of cray fish Astacus leptodactylus (Crustacea, Decapoda). Cell and Tissue Research, 319: 331–339. Nebel C., Romestand B., Negre-Sadargues G., Grousset E., Aujoulat F., Bacal J., Bonhomme F. and Charmantier G. 2005. Differential freshwater adaptation in juvenile sea bass Dicentrarchus labrax: Involvement of gills and urinary system. Journal of Experimental Biology, 208: 3859–3871. O'connell C.P. 1981. Development of organ systems in the northern anchovy Engraulis mordax and other teleosts. American Zoology, 21: 429–446. Oguz A.R. 2018. Development of osmoregulatory tissues in the Lake Van fish (Alburnus tarichi) during larval development. Fish Physiology and Biochemistry, 44: 227–233. Rambourgh P.J. 1999. The gill of fish larvae. Is it primarily a respiratory or an ionoregulatory. Journal of Fish Biology, 55(A): 186–204. Shelbourne J.E. 1957. Site of chloride regulation in marine fish larvae. Nature, 180: 920–922. Shikano T. and Fujio Y. 1999. Changes in salinity tolerance and branchial chloride cells of newborn guppy during freshwater and seawater adaptation. Journal of Experimental Zoology, 284: 137–146. Van Der Heijden A.J.H., Van Der Meij J.C.A., Flik G. and Wendelaar Bonga S.E. 1999. Ultra-structure and distribution dynamics of chloride cells in tilapia larvae in fresh water and sea water. Cell Tissue Research, 297: 119–130. Varsamos S., Connes R., Diaz J.P., Barnabe G. and Charmantier G. 2001. Ontogeny of osmoregulation in the European sea bass Dicentrarchus labrax L. Marine Biology, 138: 909– 915. Varsamos S., Nebel C. and Charmantier G. 2005. Ontogeny of osmoregulation in postembryonic fish: A review. Comparative Biochemistry and Physiology (A), 141: 401–429. Wales B. and Tytler P. 1996. Changes in chloride cell distribution during early larval stages of Clupea harengus. Journal of Fish Biology, 49: 801–814. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,144 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 427 |