تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 744 |
تعداد مقالات | 7,079 |
تعداد مشاهده مقاله | 10,193,115 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 6,873,686 |
غربالگری اکتینوباکترهای نمک دوست دریایی ترشح کننده آنزیم لیپاز از رسوبات آلوده به روغن دریاچه نمک ارومیه | ||
فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان | ||
دوره 9، شماره 3، آذر 1400، صفحه 47-66 اصل مقاله (743.4 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22124/japb.2021.18589.1408 | ||
نویسندگان | ||
راضیه ساداتی1؛ نیما شیخ بیگلو* 2؛ رسول شکری3 | ||
1دانشجوی دکتری میکروبیولوژی، گروه میکروبیولوژی، واحد زنجان، دانشگاه آزاد اسلامی، زنجان، ایران | ||
2استادیار گروه زیستشناسی، دانشکده علوم، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران | ||
3استادیار گروه میکروبیولوژی، واحد زنجان، دانشگاه آزاد اسلامی، زنجان، ایران | ||
چکیده | ||
در این مطالعه گونههای اکتینوباکتر تولید کننده لیپاز از محلهای آلوده به روغن دریاچه نمک ارومیه جدا شدند. تمام سویههای اکتینوباکتر به منظور تعیین فعالیت لیپازی با استفاده از دو سوبسترای لیپیدی Tween-20 و روغن زیتون مورد بررسی قرار گرفتند. پس از استخراج DNA، سویههای جدا شده با بررسی ژن 16S rRNA شناسایی شدند. شش گونه اکتینوباکتر نمک دوست با عناوین LUG03، LUS05، LUG09، LUN15، LUG21 و LUB22 از رسوبات نمک دریاچه ارومیه (بندر شرفخانه) جدا شد که چهار گونه از آنها فعالیت لیپولیتیک مناسبی داشتند و از این میان سویه LUS05 دارای بیشترین فعالیت لیپولیتیک بود. تعیین توالی ژن 16S rRNA مشخص کرد که جدایهها متعلق به گونههای Streptomyces sp.، Nocardiopsis sp.، Glutamicibacter sp. و Brachybacterium sp. بودند. | ||
کلیدواژهها | ||
اکتینوباکترهای نمک دوست؛ لیپاز؛ دریاچه ارومیه | ||
مراجع | ||
Abdelfattah M.S., Elmallah M.I., Hawas U.W., Abou El-Kassema L.T. and Eid M.A. 2016. Isolation and characterization of marine-derived actinomycetes with cytotoxic activity from the Red Sea coast. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine, 6(8): 651–657. Al-Dhabi N.A., Esmail G.A., Ghilan A.K. and Arasu M.V. 2020. Isolation and screening of Streptomyces sp. Al-Dhabi-49 from the environment of Saudi Arabia with concomitant production of lipase and protease in submerged fermentation. Saudi Journal of Biological Sciences, 27(1): 474–479. Arasu M.V., Esmail G.A. and Al-Dhabi N.A. 2016. Hypersaline actinomycetes and their biological applications. P: 229–245. In: Dhanasekaran D. and Jiang Y. (Eds.). Actinobacteria- Basics and Biotechnological Applications. InTechOpen, UK. Baird R.B., Eaton A.D. and Rice E.W. 2017. Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater. American Public Health Association, USA. 1796P. Claverias F.P., Undabarrena A.N., Gonzalez M., Seeger M. and Camara B.P. 2015. Culturable diversity and antimicrobial activity of Actinobacteria from marine sediments in Valparaiso bay, Chile. Frontiers in Microbiology, 28(6): 1–11 (737). Das R., Romi W., Das R., Sharma H.K. and Thakur D. 2018. Antimicrobial potentiality of Actinobacteria isolated from two microbiologically unexplored forest ecosystems of Northeast India. BMC Microbiology, 18(1): 1–16. Espinosa E., Sanchez S. and Farres A. 1990. Nutritional factors affecting lipase production by Rhizopus delemar CDBB H313. Biotechnology Letters, 12(3): 209–214. Essien J.P. and Udosen E.D. 2000. Distribution of actinomycetes in oil contaminated ultisols of the Niger Delta (Nigeria). Journal of Environmental Sciences, 12(3): 296–302. Gopinath S.C., Anbu P., Lakshmipriya T. and Hilda A. 2013. Strategies to characterize fungal lipases for applications in medicine and dairy industry. BioMed Research International, 20(1): 1–10. Gopinath S.C., Hilda A. and Anbu P. 2005. Extracellular enzymatic activity profiles in fungi isolated from oil-rich environments. Mycoscience, 46(2): 119–126. Hasan F., Shah A.A. and Hameed A. 2006. Industrial applications of microbial lipases. Enzyme and Microbial Technology, 39(2): 235–251. Ilesanmi O.I., Adekunle A.E., Omolaiye J.A., Olorode E.M. and Ogunkanmi A.L. 2020. Isolation, optimization and molecular characterization of lipase producing bacteria from contaminated soil. Scientific African, 8: 1–10 (e00279). Jenifer J.S., Donio M.T., Viji V.T., Velmurugan S., Babu M.M. and Dhas S.A. 2013. Halo-alkaliphilic actinomycetes from solar salt works in India: Diversity and antimicrobial activity. Blue Biotechnology Journal, 2(1): 137–151. Jensen V. 1975. Bacterial flora of soil after application of oily waste. Oikos, 26(2): 152–158. Jose P.A. and Jebakumar S.R. 2014. Unexplored hypersaline habitats are sources of novel actinomycetes. Frontiers in Microbiology, 5: 1–3 (242). Kumar S., Stecher G., Li M., Knyaz C. and Tamura K. 2018. MEGA X: Molecular evolutionary genetics analysis across computing platforms. Molecular Biology and Evolution, 35(6): 1547–1549. Law J.W.F., Ser H.L., Duangjai A., Saokaew S., Bukhari S.I., Khan T.M. Ab Mutalib N.S., Chan K.G., Goh B.H. and Lee L.H. 2017. Streptomyces colonosanans sp. nov., a novel actinobacterium isolated from Malaysia mangrove soil exhibiting antioxidative activity and cytotoxic potential against human colon cancer cell lines. Frontiers in Microbiology, 16(8): 1–15 (877). Lee L.H., Zainal N., Azman A.S., Eng S.K., Goh B.H. and Yin W.F. 2014. Diversity and antimicrobial activities of Actinobacteria isolated from tropical mangrove sediments in Malaysia. The Scientific World Journal, 14: 234–242. Malviya N., Yandigeri M.S., Yadav A.K., Solanki M.K. and Arora D.K. 2014. Isolation and characterization of novel alkali-halophilic actinomycetes from the Chilika brackish water lake, India. Annals of Microbiology, 64(4): 1829–1838. Mehnaz D., Abdulla K., Aiysha D., Zaheer A. and Mukhtar S. 2017. Actinomycetes: A source of industrially important enzymes. Journal of Proteomics Bioinform, 10: 316–319. Mishra S. and Gupta N. 2014. Inducers for the enhanced production of lipase by Streptomyces isolated from mangrove ecosystem. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences, 3(11): 370-376. Nagarajan S. 2012. New tools for exploring “old friends-microbial lipases”. Applied Biochemistry and Biotechnology, 168(5): 1163–1196. Oren A. 2010. Industrial and environmental applications of halophilic microorganisms. Environmental Technology, 31(8-9): 825–834. Palla M.S., Guntuku G.S., Muthyala M.K., Pingali S. and Sahu P.K. 2018. Isolation and molecular characterization of antifungal metabolite producing actinomycete from mangrove soil. Beni-Suef University Journal of Basic and Applied Sciences, 7(2): 250–256. Phillips K., Zaidan F., Elizondo O.R. and Lowe K.L. 2012. Phenotypic characterization and 16S rDNA identification of culturable non-obligate halophilic bacterial communities from a hypersaline lake, La Sal del Rey, in extreme South Texas (USA). Aquatic Biosystems, 8(1): 1–11. Ramnath L., Sithole B. and Govinden R. 2017. Identification of lipolytic enzymes isolated from bacteria indigenous to Eucalyptus wood species for application in the pulping industry. Biotechnology Reports, 15: 114–124. Rathi P., Goswami V.K., Sahai V. and Gupta R. 2002. Statistical medium optimization and production of a hyperthermostable lipase from Burkholderia cepacia in a bioreactor. Journal of Applied Microbiology, 93(6): 930–936. Rowe M.T. and Gilmour A. 1982. Growth, enzyme production and changes in oxygen tension occurring during batch cultivation of psychrotrophic Pseudomonas fluorescens strains. Milk Science International, 37: 597–600. Sakai Y., Hayatsu M. and Hayano K. 2002. Use of Tween 20 as a substrate for assay of lipase activity in soils. Soil Science and Plant Nutrition, 48(5): 729–734. Singh R., Gupta N., Goswami V.K. and Gupta R. 2006. A simple activity staining protocol for lipases and esterases. Applied Microbiology and Biotechnology, 70(6): 679–682. Thomson C.A., Delaquis P.J. and Mazza G. 1999. Detection and measurement of microbial lipase activity: A review. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 39(2): 165–187. Treichel H., De Oliveira D., Mazutti M.A., Di Luccio M. and Oliveira J.V. 2010. A review on microbial lipases production. Food and Bioprocess Technology, 3(2): 182–196. Vishnupriya B., Sundaramoorthi C., Kalaivani M. and Selvam K. 2010. Production of lipase from Streptomyces griseus and evaluation of bioparameters. International Journal of ChemTech Research, 2(3): 1380–1383.
| ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 739 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 567 |