تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 743 |
تعداد مقالات | 7,071 |
تعداد مشاهده مقاله | 10,142,135 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 6,855,333 |
تاثیر تغذیه با آرتمیای غنی شده با عصاره الکلی برگ گیاه حرا (Avicennia marina) بر عملکرد رشد، بازماندگی و تحمل استرس در پستلارو میگوی سفید غربی (Penaeus vannamei) | ||
فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان | ||
مقاله 5، دوره 5، شماره 3، آبان 1396، صفحه 75-94 اصل مقاله (995.87 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22124/japb.2017.2595 | ||
نویسندگان | ||
محمد حاجیان1؛ عقیل دشتیان نسب3؛ ابوالفضل ناجی4؛ | ||
1دانشجوی کارشناسی ارشد شیلات، گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران | ||
2دانشیار گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران | ||
3استادیار موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، پژوهشکده میگوی کشور، بوشهر، ایران | ||
4استادیار گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران | ||
چکیده | ||
در پژوهش حاضر، ناپلی آرتمیا با غلظتهای مختلف (2/0 و 4/0 گرم در لیتر) عصاره الکلی برگ گیاه حرا (Avicennia marina) غنیسازی و همراه با غذای پایه کنسانتره در تغذیه پستلارو میگوی سفید غربی (میانگین طول کل 05/0±2/0 سانتیمتر و میانگین وزن 20/0±10/10 میلیگرم) به مدت 30 روز استفاده شد. عملکرد رشد شامل میزان طول کل، وزن و ضریب رشد ویژه در روزهای 1، 15 و 30 و درصد بازماندگی در انتهای دوره پرورش تعیین شد. آزمایش استرس شوری و استرس فرمالین نیز در روزهای 15 و 30 دوره پرورش انجام شد. نتایج نشان داد استفاده از عصاره برگ حرا در غلظتهای 2/0 و 4/0 گرم در لیتر بر عملکرد رشد میگوها نسبت به تیمار شاهد تاثیر مثبت داشت. میگوهای تغذیه شده با آرتمیای غنی شده بطور معناداری از بازماندگی بیشتری برخوردار بودند. تحمل استرس شوری در میگوهای تغذیه شده با آرتمیای غنی شده بیشتر از تیمار شاهد بود. در تست فرمالین نیز بازماندگی میگوهای تغذیه شده با عصاره برگ حرا نسبت به تیمار شاهد بیشتر بود، هر چند اختلاف معنیدار نبود. در مجموع، استفاده از آرتمیای غنی شده با عصاره برگ حرا در مرحله لاروی میگوی سفید غربی میتواند موجب بهبود کیفیت پستلاروها شود. | ||
کلیدواژهها | ||
گیاه حرا؛ میگوی سفید غربی؛ عملکرد رشد؛ استرس | ||
مراجع | ||
تاجبخش س.، محمودپور م. و حقیقی م.ع. 1384. اثر ضدباکتریایی عصاره حاصل از برگ گیاه حرا (Avicennia marina) بر روی استافیلوکوکوس اوریوس، اشریشیاکلی و سودوموناس ایروژینوزا. طب جنوب، 8(1): 7-1. تقیزادهع.،دانهکارا.،کامرانیا.ومحمودیب.1388. بررسی پراکنش و آمیختگی اجتماعات جنگلی مانگرو در رویشگاه سیریک استان هرمزگان. مجله جنگل ایران، 1(1): 34-25. علیزادهبهبهانیب.،طباطبایییزدیف.، شهیدی ف. و محبی م. 1392. اثر ضدقارچی عصارههای آبی و متانولی برگ گیاه حرا (Avicennia marina) بر آلترناریا آلترناتا و پنی سیلیوم سیترینوم. مجله دانشگاه علوم پزشکی رفسنجان، 12(12): 1024-1015. فتحی مقدم ه.، مختاری م.، کمایی ل. و آهنگرپور ا. 1390. بررسی اثر عصاره آبی و آبی- الکلی برگ گیاه حرا در موش صحرایی نر دیابتی شده با استرپتوزوتوسین. مجله دانشگاه علوم پزشکی رفسنجان، 10(4): 254-245. Abeysinghe G. 2010. Antibacterial activity of some medicinal mangroves against antibiotic resistant pathogenic bacteria. Indian Journal of Pharmaceutical Science, 72(2): 167–172. Achmadi S., Syahbirin G., Choong E.T. and Hemingway R.W. 1994. Catechin-3-O-rhamnoside chain extender units in polymeric procyanidins from mangrove bark. Phytochemistry, 35(1): 217–219. Agoramoorthy G., ChandrasekarauV., Vemkatesalu V. and Hsu M.J. 2007. Antibacterial and antifungal activity of fatty acid methyl esters of blind-your-eye mangrove from India. Brazilian Journal of Microbiology, 38: 739–742. Avenido P. and Serrano A.E.J. 2012a. Effects of the apple mangrove (Sonneratiacaseolaris) on antimicrobial, immunestimulatory and histological responses in black tiger shrimp postlarvae fed at varying feeding frequency. AACL Bioflux, 5(3): 112–123. Avenido P. and Serrano A.E.J. 2012b. Effects of the apple mangrove (Sonneratia caseolaris) on growth, nutrient utilization and digestive enzyme activities of the black tiger shrimp Penaeus monodon postlarvae. European Journal of Experimental Biology, 2(5): 1603–1608. Avenido P. and Serrano A.E.J. 2012c. Twig extract of the apple mangrove affects the activities of trypsin, chymotrypsin and lipase in postlarval black tiger shrimp Penaeus monodon at varying feeding frequencies. ELBA Bioflux, 4(2): 56–61. Balcazar J.L. and Rojas-Luna T. 2007. Inhibitory activity of probiotic Bacillus subtilis UTM 126 against Vibrio species confers protection against vibriosis in juvenile shrimp (Litopenaeus vannamei). Current Microbiology, 55: 409–412. Bandaranayake W.M. 2002. Bio-activities, bioactive compounds and chemical constituents of mangrove plants. Wetlands Ecology and Management, 10: 421–452. BarmanD.,NenP.,MandalS.C. and Kumar V. 2013. Immunostimulants for aquaculture health management. Journal of Marine Science: Research and Development, 3(3): 1–11 (1000134). Basak U.C., Das A.B. and Das P. 1998. Seasonal changes in organic constituents in leaves of nine mangrove species. Marine and Freshwater Research, 49(5): 369–372. Cardenas J.V., Galvez A.O., Brito L.O., Galarza E.V., Pitta D.C. and Rubin V.V. 2015. Assessment of different levels of green and brown seaweed meal in experimental diets for white leg shrimp (Litopenaeus vannamei, Boone) in recirculating aquaculture system. Aquaculture International, 23(6): 1491–1504. Citarasu T., Sivaram V., Immanuel G., Rout N. and Murugan V. 2006. Influence of selected Indian immunostimulant herbs against white spot syndrome virus (WSSV) infection in black tiger shrimp, Penaeus monodon with reference to haematological, biochemical and immunological changes. Fish and Shellfish Immunology, 21: 372–384. Darachai J., Piyatiratitivorakul S., Kittakoop P., Nitithamyong C. and Menasveta P. 1998. Effects of astaxanthin on larval growth and survival of the giant tiger prawn, Penaeus monodon. P: 117–121. In: Flegel T.W. (Ed.). Advances in Shrimp Biotechnology. Proc. Special Session on Shrimp Biotechnology, 5th Asian Fisheries Forum, Thailand. Dhayanithi N.B., Ajith Kumar T.T., Valsala H. and Tissera K. 2013. A study on the effect of using mangrove leaf extracts as a feed additive in the progress of bacterial infections in marine ornamental fish. Journal of Coastal Life Medicine, 1(3): 217–224. Dy Penaflorida V. and Golez N.V. 1996. Use of seaweed meals from Kappaphycus alvarezii and Gracilaria heteroclada as binders in diets for juvenile shrimp Penaeus monodon. Aquaculture, 143(3-4): 393–401. Fabiola G.A., Palacios E., Ibarra A.M. and Racotta S. 2005. Larval quality in relation to consecutive spawning in white shrimp Litopenaeus vannamei Boone. Aquaculture Research, 36: 890–897. Forster G., Citarasu T., Sivaram V., Michael Babu M. and Palavesam A. 2000. Delivery of HUFA, probionts and biomedicine through bioencapsulated Artemia as a means to enhance the growth and survival and reduce the pathogenicity in shrimp Penaeus monodon postlarvae. Aquaculture International, 15: 137–152. Han W.D., Chen L. and Yuan M.J. 2004. The barnacle control on the planted young mangle trees. Journal of Fujian Forestry Science and Technology, 31(1): 57–70. Hosseinifar S.H., Zare P. and Merrifield D.L. 2010. The effects of inulin on growth factors and survival of the Indian white shrimp larvae and post-larvae (Fenneropenaeus indicus). Aquaculture Research, 41(9): 348–352. Immanuel G., Citarasu T., Sivaram V. and Palavesam B. 2007. Delivery of HUFA probionts and biomedicine through bio-encapsulated Artemia as a means to enhance the growth and survival and reduce the pathogenesity in shrimp Penaeus monodon postlarvae. Aquaculture International, 15: 137–152. Immanuel G., Palavesam A. and Peter Marian M. 2001. Effects of feeding lipid enriched Artemia nauplii on survival, growth, fatty acids and stress resistance of post larvae Penaeus indicus. Asian Fisheries Science, 14: 377–388. Immanuel G., Sivagnamavelmurugan M., Marudhupandi T., Radhakrishnam S. and Palavesam A. 2012. The effect of fucoidan from brown seaweed Sargassum wightii on WSSV resistance and immune activity in shrimp Penaeus monodon (Fab). Fish and Shellfish Immunology, 32(3): 551–564. Miles D.H., Kokpol U., Chittawong V., Tip-Pyang S., Tunsuwan K. and Nguyen C. 1998. Mangrove forests-the importance of conservation as a bioresource for ecosystem diversity and utilization as a source of chemical constituents with potential medicinal and agricultural value. IUPAC, 70: 1–9. Millamena O.M., Bom Beo R.F., Jumalon N.A. and Simpson K.L. 1998. Effects of various diets on the nutritional value of Artemia sp. as food for the prawn Penaeus monodon. Marine Biology, 98: 211–221. Pena-Rodraiguez A. 2010. Recent advance of research and development on marine biotechnology in China. Postgraduate Conference on Marine Biology and Biotechnology, China. P: 12. Ress F., Cure K., Piyatirativorakul S., Sorgaeloos P. and Menas Veta P. 1994. Highly unsaturated fatty acid requirements of Penaeus monodon postlarvae: An experimental approach based on Artemia enrichment. Aquaculture, 227: 170–130. Stottrup J.G. and McEvoy L.A. 2003. Live Feeds in Marine Aquaculture. Blackwell Science Ltd., UK. 318P. Zhu F., Chen X., Yuan Y., Huang M., Sun H. and Xiang W. 2009. The chemical investigations of the mangrove plant Avicennia marina and its endophytes. The Open Natural Products Journal, 2: 24–32.
| ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,178 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 945 |