تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 748 |
تعداد مقالات | 7,108 |
تعداد مشاهده مقاله | 10,240,536 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 6,898,092 |
بررسی اثر محافظتی ویتامین C بر شکستگی DNA در سلولهای آبشش و کبد ماهی قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss) در مواجهه با غلظتهای مختلف نانوذره اکسید روی (ZnO) | ||
فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان | ||
مقاله 8، دوره 4، شماره 4، اسفند 1395، صفحه 111-132 اصل مقاله (1.57 M) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
نویسندگان | ||
الهه چهارده بالادهی* 1؛ علی اکبر هدایتی2؛ حامد کلنگی میاندره3؛ طاهره باقری4 | ||
1دانشجوی کارشناسی ارشد شیلات، گروه شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران | ||
2دانشیار گروه شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران | ||
3استادیار گروه شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران | ||
4استادیار گروه شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران. | ||
چکیده | ||
این مطالعه به بررسی اثر آلاینده نوظهور نانوذره اکسید روی (ZnO) بر روی بافت کبد و آبشش ماهی قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss) و به دنبال آن بررسی اثر ایمنی ویتامین C بر شکستگی DNA پس از اعمال نانوذره پرداخته است. برای این منظور از ترکیب سطوح مختلف نانوذره روی (0، 40 و 80 میلیگرم در لیتر) و ویتامینC (0، 400 و 800 میلیگرم در کیلوگرم) استفاده شد (9 تیمار هر یک با سه تکرار) و ماهیان با میانگین وزنی 10±170 گرم به مدت 10 روز تحت تیمار با جیرههای آزمایشی قرار گرفتند. نمونهگیری در روزهای پنجم و دهم آزمایش از بافت کبد و آبشش صورت گرفت. نمونههای مورد نظر پس از جداسازی در میکروتیوپهای حاوی الکل %96 نگهداری شدند. استخراج DNA به روش شکستگی DNA با الکتروفورز انجام گرفت، سپس با ژل الکتروفورز اجرا شد و در پایان با دستگاه ژلداک عکسبرداری شد. درصد شکستگیDNA با استفاده از میانگین وزنی تعیین شد. بر طبق نتایج، اثر غلظت ZnO و ویتامین C و اثر متقابل زمان- غلظت بر روی سطح آسیب DNA در بافت کبد و آبشش بین تیمارهای مختلف کاملا معنیدار بود. بیشترین آسیب در بافت کبد و آبشش در غلظت80 میلیگرم بر لیتر نانوذره اکسید روی در روز پنجم مشاهده شد. همچنین در هر دو بافت در روز دهم میزان شکستگی DNA کاهش یافت. به علاوه، حضور ویتامین C موجب کاهش شکستگی DNA شد. | ||
کلیدواژهها | ||
آبزی؛ آلودگی؛ بهبود مقاومت؛ نانو سمشناسی | ||
مراجع | ||
منابع
خدابخشی ل. و پورباقر ه. 1392. اثر نانوذره اکسید روی (ZnO) بر بافت کبد و آبشش ماهی قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss). پروژه عملی، دانشگاه تهران. 54ص. رسولی س. و عبدی ک. 1384. مبانی ایمنیشناسی ماهیان. انتشارات سیمرغ. 251ص. غفاری ح.، پورباقر ه. و فرحمند ح. 1395. اثر سم مالاتیون بر شکستگی DNA در بافت کبد و آبشش ماهی قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss) با استفاده از میانگین وزنی. نشریه شیلات (مجله منابع طبیعی ایران)، 69(1): 99-89. یگانی م. 1377. نگاهی تازه به ویتامین ث. انتشارات سپهر. 180ص. Ahmed M.K., Kundu G.K., Al-Mamun M.H., Sarkar S.K., Akter M.S. and Khan M.S. 2013. Chromium (VI) induced acute toxicity and genotoxicity in freshwater stinging catfish, Heteropneustes fossilis. Journal of Ecotoxicology and environmental Safety, 92: 64–70. Ali D., Nagpure N.S., Kumar S., Kumar R. and Kushwaha B. 2008. Genotoxicity assessment of acute exposure of chlorpyrifos to freshwater fish Channa punctatus (Bloch) using micronucleus assay and alkaline single-cell gel electrophoresis. Journal of Chemosphere, 71(10): 1823–1831. Azewedo P.A., Leeson S., Cho C.Y. and Bureau D.P. 2004. Growth and feed utilization of large size rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and Atlantic salmon (Salmo salar) reared in freshwater: Diet and species effects, and responses over time. Aquaculture Nutrition, 10(6): 401–411. Banaee M., Mirvaghefi A.R., Rafei G.R. and Majazi Amiri B. 2008. Effect of sub-lethal diazinon concentration on blood plasma biochemistry. International Journal of Environmental Research, 2(2): 189–198. Banu B.S., Danadevi K., Rahman M.F., Ahuja Y.R. and Kaiser J. 2001. Genotoxic effect of mono-crotophos to sentinel species using comet assay. Food and Chemical Toxicology, 39(4): 361–366. Borm P.J., Robbins D., Haubold S., Kuhlbusch T., Fissan H. Donaldson K., Schins R., Stone V., Kreyling W., Lademann J., Krutmann J., Warheit D. and Oberdorster E. 2006. The potential risks of nanomaterials: A review carried out for ECETOC. Particle and Fiber Toxicology, 3(11): 48–57. Chae Y.J., Pham C.H., Lee J., Bae E., Yi J. and Gu M.B. 2009. Evaluation of the toxic impac of silver nanoparticles on Japanese medaka (Oryzias latipes). Aquatic Toxicology, 94(4): 320–327. Chapman P.M., Dexter R.N. and Long E.R. 1998. Synoptic measures of sediments contamination, toxicity and infaunal-community composition (the Sediment Quality Triad) in San Francisco Bay. Marine Ecological Progress Series, 37: 75–93. Dabrowski K. 2001. Ascorbic Acid in Aquatic Organisms Status and Perspectives. CRC Press, USA. 280P. De Menezes G.C., Tavares-Dias M., Ono E.A., De Andrade J.I.A., Brasil E.M., Roubach R., Urbinati E.C., Marcon J.L. and Affonso E.G. 2006. The influence of dietary vitamin C and E supplementation on the physio-logical response of pirarucu, Arapaima gigas, in net culture. Comparative Biochemistry and Physiology A, 145(2): 9–24. Devaux A., Pesonen M. and Monod G. 1997. Alkaline comet assay in rainbow trout hepatocytes. Toxicology in Vitro, 11(1-2): 71–79. Farkas J., Christian P., Urrea J.A.G. and Roos N. 2010. Effect of silver and gold nanoparticles on rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) hepatocyteses. Aquatic Toxicology, 96: 44–52. Fassbender C. and Braunbeck T. 2013. Assessment of genotoxicity in gonads, liver and gills of zebrafish (Danio rerio) by use of the comet assay and micronucleus test after in vivo exposure to methyl methanesulfonate. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 91(1): 89–95. Ferrari M. 2005. Cancer nanotechnology: Opportunities and challenge. Nature Reviews, Cancer, 5: 161–171. Frenzilli G., Nigro M. and Lyons B.P. 2009. The comet assay for the evaluation of genotoxic impact in aquatic environment. Mutation Research, Reviews in Mutation Research, 681: 80–92. Guilherme S., Gaivao I., Santos M.A. and Pacheco M. 2010. European eel (Anguilla anguilla) genotoxic and pro-oxidant responses following short-term exposure to Roundup®- a glyphosate-based herbicide. Mutagenesis, 25(5): 523–530. Halver J.E. 1980. Vitamin require-ments of finfish. P: 8–191. In: Santos W., Lopes N., Barbosa J.J., Chaves D. and Valente J.V. (Eds.). Nutrition and Food Science, Present Knowledge and Utilization. Plenum Press, New York. Handy R.D., Al-Bairuty G., Al-Jubory A., Ramsden C.S., Boyle D. and Shaw B.J. 2006. Effects of manufactured nanomaterials on fishes: a target organ and body systems physiology approach. J Fish Biol. 79(4): 821-853. Henao B., Palacio J.A. and Camargo M. 2005. Evaluacion genotoxica de los plaguicidas cipermetrina y diazinon en tilapia roja (Oreochromis sp.). Journal of Actualidades Biologicas, 27(82): 43–55. Lee R.F. and Steinert S. 2003. Use of single cell gel electro-phoresis/comet assay for detecting DNA damage in aquatic (marine and freshwater) animals. Journal of Mutation Research, 544: 43–64. Li M.H. and Robinson E.H. 1999. Dietary ascorbic acid requirement for growth and health in fish. Journal of Applied Aquaculture, 9(2): 53–79. Mitchelmore C.L. and Chipman J.K. 1997. DNA strand breakage in aquatic organisms and the potential value of the Comet assay in environmental monitoring. Mutation Research-Fundamental and Molecular Mechanisms of Mutagenesis, 399(2): 135–147. Muntro D., Marrero M., Izquierdo M.S., Robaina L., Vergara J.M. and Tort L. 1999. Effect of vitamin E and C dietary supplementation on some immune parameters of gilthead seabream (Sparus aurata) juveniles subjected to crowding stress. Aquaculture, 171(3-4): 269–278. N.R.C. 2011. Nutrient Requirements of Fish and Shrimp. National Academies Press, Washington DC, USA. 392P. Safahieh A., Hedayati A., Savari A. and Movahedinia A. 2012. Effect of sublethal dose of mercury toxicity on liver cells and tissue of yellowfin seabream. Journal of Toxicology and Industrial Health, 28(7): 583–592. Sharma S., Nagpure N.S., Kumar R., Pandey S., Srivastava S.K., Singh P.J. and Mathur P.K. 2007. Studies on the genotoxicity of endosulfan in different tissues of fresh water fish Mystus vittatus using the comet assay. Journal of Archives of Environmental Contamination and Toxicology, 53(4): 617–623. Sies H. and Stahl W. 1995. Vitamins E and C, betacarotene, and other carotenoids as antioxidants. The American Journal of Clinical Nutrition, 62(6): 1315–1321. Singh N., Monshion B., Jenkis G.I.S., Griffiths S.M., Williams P.M. and Moffeis T.O. 2009. Nanogenotoxicology: the DNA damaging potential engineered nanomaterials. Biomaterials, 30: 3897–3974. Treves-Brown K. 2000. Applied Fish Pharmacology. Master of Arts, Cambridge, UK. 302P. Verlhac V., Obach A., Gabaudan J., Schuep W. and Hole R. 1998. Immunomodulation by dietaryvitaminC and glucan in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish and Shellfish Immunology, 8: 409–424. Winston G.W., Regoli F., Dugas A.J., Fong J.H. and Blanchard K.A. 1998. A rapid G.C. assay for determining oxyradical scavenging capacity of antioxidants and biological fluids, free radical. Free Radical Biology and Medicine, 24(3): 461–480. Wise J.P., Goodale B.C., Wise S.S., Craig G.A., Pongan A.F., Walter R.B., Thompson W.D., Ng A.K., Aboueissa A.M., Mitani H., Spalding M.J. and Mason M.D. 2010. Silver nanospheres are cytotoxic and genotoxic to fish cells. Aquatic Toxicology, 97(1): 34–41. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,449 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,276 |