تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 748 |
تعداد مقالات | 7,112 |
تعداد مشاهده مقاله | 10,246,358 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 6,899,976 |
بررسی کیفیت اسپرم پوشش دار شده قوچ بعد از 72 ساعت ذخیره سازی در 4 درجه سانتیگراد و افزودن مایع منی | ||
تحقیقات تولیدات دامی | ||
مقاله 1، دوره 3، شماره 1، خرداد 1393، صفحه 1-9 اصل مقاله (137.32 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
نویسندگان | ||
علیرضا وافری1؛ محمد روستائی علیمهر* 2 | ||
1دانشجوی کارشناسی ارشد فیزیولوژی گروه علوم دامی دانشکده علوم کشاورزی، دانشگاه گیلان | ||
2دانشیار گروه علوم دامی دانشکده علوم کشاورزی، دانشگاه گیلان | ||
چکیده | ||
این آزمایش به منظور بررسی اثر افزودن مایع منی به اسپرم پوششدار شده پس از 72 ساعت ذخیرهسازی انجام شد. منی از 4 راس قوچ نژاد تالشی به وسیله واژن مصنوعی جمعآوری شد. جهت پوششدارکردن اسپرم، منی در لوله حاوی تریس-فروکتوز-15 درصد زرده تخم مرغ جمعآوری شد. نمونهها بعد از ارزیابی اولیه، تجمیع و سانتریفیوژ شدند. پس از حذف مایع فوقانی، رسوب رقیق شد. نمونه به 3 بخش مساوی تقسیم و تا °C4 سرد شد و بعد به مدت 68 ساعت ذخیره شد. بخش اول نمونهها سانتریفیوژ شده و مایع فوقانی برداشته شد (روشI). بخش دوم نمونهها سانتریفیوژ شده و دوباره با مایع فوقانی مخلوط شد (روشII). بخش سوم نمونهها بدون تغییر در دمای °C4 نگهداری شدند (روشIII). نمونههای به دست آمده از هر روش به سه قسمت مساوی تقسیم شد و مقادیر صفر، 10 و 20 درصد مایع منی به آنها اضافه شد و در °C4 ذخیره شدند. تحرک پیشرونده، سلامت غشای پلاسمایی، زندهمانی اسپرم و سلامت غشای آکروزوم نمونهها پس از 4 ساعت بررسی شدند. زندهمانی در مقدار صفر درصد مایع منی (416/69%) بیشتر از مقدار 20 درصد مایع منی (667/60%) بود (05/0>P). کمترین میزان تحرک پیشرونده (667/11%)، زندهمانی اسپرم (167/59%) و سلامت غشای پلاسمایی (167/48%) در روش 1 مشاهده شد (05/0>P). روشها اثری بر سلامت غشای آکروزوم نداشتند (05/0<P). بنابراین حذف زرده تخم مرغ و افزودن مایع منی به اسپرم پوششدارشده پس از 72 ساعت سبب کاهش ماندگاری اسپرم میشود. | ||
کلیدواژهها | ||
اسپرم پوششدار شده؛ سانتریفیوژ؛ قوچ تالشی؛ مایع منی | ||
مراجع | ||
محمدی نودهی آ. و روستائی علیمهر م. 1392 بررسی اثر زرده تخم مرغ و سرما بر ذخیره سازی اسپرم پوششدار شده قوچ تالشی درC °5. نشریه پژوهشهای علوم دامی ایران، 5 (1) 83-77. Aboagla E.M. and Terada T. 2004. Effects of egg yolk during the freezing step of cryopreservation on the viability of goat spermatozoa. Theriogenology, 62: 1160-1172.
Anel L., Kaabi M., Abroug B., Alvarez M., Anel E., Boixo J.C., de la Fuente L.F., de Paz P. 2005. Factors influencing the success of vaginal and laparoscopic artificial insemination in churra ewes: a field assay. Theriogenology, 63:1235-1247.
Barrios B., Pérez R., Gallego M. and Tato A. 2000. Seminal plasma proteins revent the cold-shock damage on ram sperm membrane. Biology of Reproduction, 63: 1531–1537.
Bergeron A., Crete M., Brindle Y. and Manjunath P. 2004. Low-density lipoprotein fraction from hen’s EY decreases the binding of the major proteins of bovine seminal plasma to sperm and prevents lipid efflux from the sperm membrane. Biology of Reproduction, 70: 708–717.
Bloom M., Evans E. and Mouritsen O.G. 1991. Physical properties of the fluid lipid-bilayer component of cell membranes: a perspective. Quarterly Reviews of Biophysics, 24: 293-397.
Bucak M.N., Atessahin A. and Yüce A. 2008. Effect of anti-oxidants and oxidative stress parameters on ram semen after the freeze-thawing process. Small Ruminant Research, 75: 128–134.
De Leeuw A.M., Den Daas G.H.E. and Woelders H. 1991. The fix vital stain method simultaneous determination of viability and acrosomal and status of bovine spermatozoa. Journal of Andrology, 12: 112-118.
De Pauw I.M.C., Van Soom D. M., Verberckmoes S. and de Kruif A. 2003. Effect of sperm coating on survical and penetrating ability of in vitro stored bovine spermatozoa. Theriogenology, 59: 1109–1122.
Dott H.M., Harrison R.A. and Foster G.C. 1979. The maintenance of motility and the surface properties of epididymal spermatozoa from bull, rabbit and ram in homologous seminal and epididymal plasma. Journal of Reproduction and Fertility, 55: 113–24.
García-Artiga C. 1994. Test de endósmosis en ovino, in: 7th International Meeting on Animal Reproduction, Murcia, Spain, pp. 77-81.
Gil J., Rodriguez-Irazoqui M., Söderquist L. and Rodriguez-Martinez H. 2002. Influence of centrifugation or low extension rates prefreezing on the fertility of ram semen after cervical insemination. Theriogenology, 57: 1781–1792.
Gil J., Sijderquist L. and Rodriguez-Martinez H. 2000. Influence of centrifugation and different extenders on post-thaw sperm quality of ram semen. Theriogenology, 54: 93-108.
Graham J.K. 1994. Effect of seminal plasma on the motility of epididymal and ejaculated spermatozoa of the ram and bull during the cryopreservation process. Theriogenology, 41: 1151-1162.
Jeyendran R.S., Van der Ven H.H. and Zaneveld L.J. 1992. The hypoosmotic swelling test: an update. Archives of Andrology, 29: 105–116.
Kaabi M., Alvarez M., Anel E., Chamorro C.A., Boixo J.C., de Paz P., Anel L. 2006. Influence of breed and age on morphometry and depth of inseminating catheter penetration in the ewe cervix: a postmortem study. Theriogenology, 66:1876-1883.
Kirkwood R.N., Vadnais M.L. and Abad M. 2008. Practical application of seminal plasma. Theriogenology, 70: 1364–1367.
Manjunath P., Nauc V., Bergeron A. and Menard M. 2002. Major proteins of bovine seminal plasma bind to the low-density lipoprotein fraction of hen's egg yolk. Biology of Reproduction, 67: 1250–1258.
Maxwell W.M.C.and Salamon S. 1993. Liquid storage of ram semen—a review. Reprodtion and Fertility Devlepment, 5: 613–38.
Muiño-Blanco T., Pérez-Pé R. and Cebrián-Pérez J.A. 2008. Seminal plasma proteins and sperm resistance to stress. Reproduction in Domestic Animals, 4: 18-31.
Muller K.P., Muller Pincemy G., Kurz A. and Labbe C. 2008. Cholesterol induced changes in trout spermatozoa. Biology of Reproduction, 78: 390-399.
National Research Council. 1985. Nutrient Requirements of Sheep. 6th revised edition. National Academies Press, Washington D.C, pp: 36-77.
Pagl R., Aurich J.E., MullerSchlosser F., Kankofer M. and Aurich C. 2006. Comparison of an extender containing defined milk protein fractions with a skim milk based extender for storage of equine semen at 5°C. Theriogenology, 66: 1115-1122.
Paulenz H., Söderquist L., Pérez-Pé R. and Berg K.A. 2002. Effect of different extenders and storage temperatures on sperm viability of liquid ram semen. Theriogenology, 57: 823-836.
Perez-Pe R., Cebrian-Perez J.A. and Muino-Blanco T. 2001. Semen plasma proteins prevent cold-shock membrane damage to ram spermatozoa. Theriogenology, 56: 425–434.
Purdy P.H. 2006. A review on goat sperm cryopreservation. Small Ruminant Research, 63: 215–225.
Quinn P.J., Chow P.Y. and White I.G. 1980. Evidence that phospholipid protects ram spermatozoa from cold shock at a plasma membrane site. Journal of Reproduction and Fertility, 60: 403-407.
Ricker J.V., Linfor J.J., Delfino W.J., Kysar P., Scholtz E.L., Tablin F., Crowe J.H., Ball B.A., Meyers S.A. 2006. Equine sperm membrane phase behavior: the effects of lipidbased cryoprotectants. Biology of Reproduction, 74: 359–365.
Roostaei-Ali Mehr M. and Sharafi F. 2013. Influence ofsperm coating and seminal plasma on frozen-thawed spermatozoa. Iranian Journal of Veterinary Reseach, 14: In press
SAS Institute. 1996. SAS/STAT User’s Guide. Release 9.1.SAS Inst., Inc., Cary, NC.
Senger P.L. 2003. Pathways of pregnancy and parturition. 2nd ed. USA: Cadmus Professional Communication.
Stellflug J.N., Cockett N.E. and Lewis G.S. 2008. The influence of breeding intensity on above and below average sexual performance rams in single and multiple sire breeding environments. Animal Reproduction Science, 104: 248-256.
Therien I., Moreau R. and Manjunath P. 1999. Bovine seminal plasma phopholipid-binding proteins stimulate phospholipid efflux from epididymal sperm. Biology of Reproduction, 61: 590-598.
Twigg J., Irvine D.S., Houston P., Fulton N., Michael L. and Aitken R.J. 1998. Iatrogenic DNA damage induced in humanspermatozoa during sperm preparation: protective significance of seminal plasma. Molecular Human Reproduction, 4: 439–445.
Varisly O., Uguz C., Agca C. and Agca Y. 2009. Motility and acrosomal integrity comparison between electro- ejaculated and epididimal ram sperm after exposure to a range of anisosmotic solutions, cryoprotective agents and low temperatures. Animal Reproduction science, 110: 256-268.
Varner D.D., Love C.C., Brinsko S.P., Blanchard T.L., Hartman D.L., Bliss S.B., Carroll B.S., Eslick M.C. 2008. Semen processing for the subfertile stallion. Journal of Equine Veterinary Science, 28: 677–685.
Witte T.S. and Schafer-Somi S. 2007. Involvement of cholesterol, calcium and progesterone in the induction of capacitation and acrosome reaction of mammalian spermatozoa. Animal Reproduction Science, 102: 181-193. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 2,076 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,101 |