| تعداد نشریات | 33 |
| تعداد شمارهها | 870 |
| تعداد مقالات | 8,471 |
| تعداد مشاهده مقاله | 53,615,320 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 9,713,716 |
بررسی خاصیت آنتیاکسیدانی زهر عروس دریایی Chrysaora hysoscella | ||
| فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان | ||
| دوره 13، شماره 4، اسفند 1404، صفحه 95-115 اصل مقاله (803.56 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22124/japb.2024.26334.1522 | ||
| نویسندگان | ||
| اصغر محمدزاده اصل* 1؛ حسین ذوالقرنین2؛ سهیلا مترودی3 | ||
| 1دکتری تخصصی زیستفناوری دریا، گروه زیستشناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران | ||
| 2استاد گروه زیستشناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران | ||
| 3استادیار گروه زیستشناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران | ||
| چکیده | ||
| برخی گونههای عروس دریایی قابلیت تولید زهری را دارند که حاوی ترکیباتی با ویژگیهای درمانی بالقوهای است. زهر عروس دریایی گونه Chrysaora hysoscella دارای خواص مختلفی است که کمتر به آنها پرداخته شده است. در این پژوهش، استخراج و تخلیص زهر عروس دریایی C. Chrysaora و خاصیت آنتیاکسیدانی آن بررسی شد. پس از استخراج زهر، با استفاده از روش کروماتوگرافی مایع با کارایی بالا (HPLC)، محدودههای آن تخلیص شد. پروتئینهای تخلیص شده با استفاده از SDS-PAGE ارزیابی شدند. اثر آنتیاکسیدانی محدودهها، با استفاده از سه روش DPPH، ABTS و FRAP مطالعه شد. نتایج به دست آمده نشان داد که زهر خام C. hysoscella حاوی 10 محدوده با وزن مولکولی 15 تا 170 کیلودالتون بود که از بین آنها، محدوده 2 جرم مولکولی کمتر از 15 کیلودالتون داشت. نتایج نشان داد که محدوده 2 به ترتیب در غلظتهای 21، 31، و 52 میکروگرم در میلیلیتر قادر به مهار 50 درصد رادیکالهای آزاد بود. با توجه به نتایج مثبت فعالیت آنتیاکسیدانی، شناسایی ترکیبات دیگر موثر موجود در زهر، نیازمند مطالعات بیشتر است. | ||
| کلیدواژهها | ||
| زهر عروس دریایی؛ خاصیت آنتیاکسیدانی؛ کروماتوگرافی؛ Chrysaora hysoscella | ||
| موضوعات | ||
| فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان | ||
| مراجع | ||
|
Bhardwaj V., Gumber D., Abbot V., Dhiman S. and Sharma P. 2015. Pyrrole: A resourceful small molecule in key medicinal hetero-aromatics. RSC Advances, 5: 15233–15266. doi: 10.1002/chin.20 1518314 Blunt J.W., Carroll A.R., Copp B.R., Davis R.A., Keyzers R.A. and Prinsep M.R. 2018. Marine natural products. Natural Product Reports, 35: 8–53. doi: 10.1039/c7 np00052a Blunt J.W., Copp B.R., Keyzers R.A., Munro M.H. and Prinsep M.R. 2017. Marine natural products. Natural Product Reports 34: 235–394. doi: 10.1039/c5np001 56k Bradford M.M. 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry, 72: 248–254. doi: 10.1016/0003-2697(76)9052 7-3 Ferdous U.T., Nurdin A., Ismail S. and Yusof Z.N.B. 2023. Evaluation of the antioxidant and cytotoxic activities of crude extracts from marine Chlorella sp. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 47: 1025–1051. doi: 10.1016/j.bcab.2022.102551 Fernandes A., Fernandes I., Cruz L., Mateus N., Cabral M. and De Freitas V. 2009. Antioxidant and biological properties of bioactive phenolic compounds from Quercus suber L. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 57: 11154–11160. doi: 10.1021/jf902093m Frazao B., Vasconcelos V. and Antunes A. 2012. Sea anemone (Cnidaria, Anthozoa, Actiniaria) toxins: An overview. Marine Drugs, 10: 1812–1851. doi: 10.33 90/md10081812 Gharibi S., Nabipour I., Kim E., Ghafari S.M., Hoseiny S.M., Kamyab M. and Seyedian R. 2016. Characterization and pharmacological activities of jellyfish, Chrysaora hysoscella captured in Bushehr Port, Iran. Iranian Journal of Toxicology, 10: 7–10. doi: 10.29252/arakmu.10.5.7 Graham W.M., Gelcich S., Robinson K.L., Duarte C.M., Brotz L., Purcell J.E., Madin L.P., Mianzan H., Sutherland K.R. and Uye S.I. 2014. Linking human well‐being and jellyfish: Ecosystem services, impacts, and societal responses. Frontiers in Ecology and the Environment, 12: 515–523. doi: 10.1890/130298 Jouiaei M., Yanagihara A.A., Madio B., Nevalainen T.J., Alewood P.F. and Fry B.G. 2015. Ancient venom systems: A review on cnidaria toxins. Toxins, 7: 2251–2271. doi: 10.3390/toxins7062251 Kawabata T., Lindsay D.J., Kitamura M., Konishi S., Nishikawa J., Nishida S., Kamio M. and Nagai H. 2013. Evaluation of the bioactivities of water-soluble extracts from twelve deep-sea jellyfish species. Fisheries Science, 79: 487–494. doi: 10.1007/s12562-013-0612-y Maduraiveeran H., Raja K. and Chinnasamy A. 2021. Anti-proliferative and antioxidant properties of nematocysts crude venom from jellyfish Acromitus flagellatus against human cancer cell lines. Saudi Journal of Biological Sciences, 1954: 28–61. doi: 10.1016/j.sjbs.2020.12.047 Mariottini G.L. 2014. Hemolytic venoms from marine cnidarian jellyfish- An overview. Journal of Venom Research, 5: 22–32. Mariottini G.L. and Pane L. 2013. Cytotoxic and cytolytic cnidarian venoms. A review on health implications and possible therapeutic applications. Toxins, 6: 108–151. doi: 10.3390/toxins60101 08 Merquiol L., Romano G., Ianora A. and D’Ambra I. 2019. Biotechnological applications of Scyphomedusae. Marine Drugs, 17: 604–616. doi: 10.3390/md17110 604 Nevalainen T.J., Peuravuori H.J., Quinn R.J., Llewellyn L.E., Benzie J.A., Fenner P.J. and Winkel K.D. 2004. Phospholipase A2 in cnidaria. Comparative Biochemistry and Physiology (B), 139: 731–735. doi: 10.1016/J.CBPC. 2004.09.006 Nisa S.A., Govindaraju K., Vasantharaja R., Kannan M. and Raja K. 2023a. Jellyfish Acromitus flagellatus (Maas) nematocyst venom-mediated biogenic synthesis of gold nano-particles and its anti-proliferative effects. Aquaculture International, 31(4): 1–10. doi: 10.1007/s10499-023-01081 Nisa S.A., Vasantharaja R. and Govindaraju K. 2023b. Anti-oxidant and anticancer activities of nematocyst venom protein of five scyphozoan Chrysaora jellyfish’s species from the coastal waters of Tamil Nadu, India. Biomass Conversion and Biorefinery, 14(8): 1–11. doi: 10.1007/s13399-023-042 06-9 Prasedya E., Frediansyah A., Martyasari N.W.R., Ilhami B., Abidin A.S., Padmi H., Fahrurrozi Juanssilfero A.B., Widyastuti S. and Sunarwidhi A. 2021. Effect of particle size on phytochemical composition and antioxidant properties of Sargassum cristaefolium ethanol extract. Scientific Reports, 11: 178–196. doi: 10.1038/s41598-021-9 5769-y Purcell J.E. 2005. Climate effects on formation of jellyfish and ctenophore blooms: A review. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom, 85: 461–476. doi: 10.101 7/S0025315405011409 Purcell J.E., Malej A. and Benovic A. 1999. Potential links of jellyfish to eutrophication and fisheries. Ecosystems at the Land‐Sea Margin: Drainage Basin to Coastal Sea, 55: 241–263. doi: 10.1029/CE0 55p0241 Richardson A.J., Bakun A., Hays G.C. and Gibbons M.J. 2009. The jellyfish joyride: Causes, consequences and management responses to a more gelatinous future. Trends in Ecology and Evolution, 24: 312–322. doi: 10.10 16/j.tree.2009.01.010 Roux J.P., Van Der Lingen C.D., Gibbons M.J., Moroff N.E., Shannon L.J., Smith A.D. and Cury P.M. 2013. Jellyfication of marine ecosystems as a likely consequence of overfishing small pelagic fishes: Lessons from the Benguela. Bulletin of Marine Science, 249: 84–89. doi: 10.5343/ bms.2011.1145 Suganthi K., Bragadeeswaran S., Kumaran N.S., Thenmozhi C. and Thangaraj S. 2012. In vitro antioxidant activities of jelly fish Chrysaora quinquecirrha venom from southeast coast of India. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine, 2: 347–351. doi: 10.1016/S2221-1691(12)60186-5 Uk L. 1970. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature, 227: 680–685. doi: 10.1038/227680 a0 Vincent J.B. 1999. Mechanisms of chromium action: Low-molecular-weight chromium-binding substance. Journal of the American College of Nutrition, 18: 6–12. doi: 10.1080/07315724.1999. 10718821 Zare A., Afshar A., Khoradmehr A., Baghban N., Mohebbi G., Barmak A., Daneshi A., Bargahi A., Nabipour I. and Almasi-Turk S. 2023. Chemical compositions and experimental and computa-tional modeling of the anticancer effects of cnidocyte venoms of jellyfish Cassiopea andromeda and Catostylus mosaicus on human adenocarcinoma A549 cells. Marine Drugs, 21: 168–175. doi: 10.3390/md21030168 | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 5 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 7 |
||