| تعداد نشریات | 33 |
| تعداد شمارهها | 874 |
| تعداد مقالات | 8,532 |
| تعداد مشاهده مقاله | 53,795,538 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 9,876,667 |
تعیین فعالیت ضد اکسایشی ریزجلبک ها و درشت جلبک ها با روش ها و حلال های مختلف | ||
| تغذیه آبزیان | ||
| دوره 11، شماره 3 - شماره پیاپی 33، مهر 1404، صفحه 17-30 اصل مقاله (855.17 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22124/janb.2026.33027.1303 | ||
| نویسندگان | ||
| هستی بیگ زاده؛ امیدوار فرهادیان* ؛ عیسی ابراهیمی؛ فریده بلالی | ||
| دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران، 841568311 | ||
| چکیده | ||
| جلبکها به عنوان منابع طبیعی غنی از ترکیبات زیستفعال، دارای توان بالایی در مهار رادیکالهای آزاد و فعالیت ضد اکسایشی هستند و به همین دلیل در پژوهشهای زیستی و کاربردی به آنها توجه شده است. هدف این مطالعه، بررسی و مقایسه کمی فعالیت ضد اکسایشی ریزجلبکها و درشتجلبکها با استفاده از دو حلال استون و اتانول و سه روش سنجش DPPH، FRAP و ABTS بود. برای این منظور، فعالیت ضد اکسایشی عصارههای ریزجلبکهای Scenedesmus quadricauda و Tetraselmis tetrathele و درشتجلبکهای Sargassum ilicifolium و Ulva lactuca ارزیابی شدند. در سنجش DPPH، بیشترین درصد مهار رادیکالهای آزاد در درشتجلبک S. ilicifolium با حلالهای استون و اتانول به ترتیب 2/35 و 2/78% بهدست آمد. در سنجش FRAP نیز بالاترین قدرت احیاکنندگی مربوط به حلال استون S. ilicifolium و حلال اتانول U. lactuca بود که بهترتیب 94 و 1/96 میکرومول در گرم اندازهگیری شد. در آزمون ABTS، بیشترین مهار رادیکالها در حلالهای استون و اتانول S. ilicifolium و بهترتیب برابر با 9/18 و 96/51% بود. در ریزجلبکها، سنجش DPPH بیشترین مهار رادیکال آزاد در حلالهای استون و اتانول T. tetrathele با مقادیر 13/16 و 17/90% بود. همچنین در آزمون FRAP، بالاترین قدرت احیاکنندگی در حلالهای استون و اتانول S. ilicifolium مشاهده شد که بهترتیب 2/37 و 2/58 میکرومول در گرم بود. در آزمون ABTS نیز بیشترین مقدار مهار رادیکال آزاد در حلال استون T. tetrathele (87/%90) و حلال اتانول S. quadricauda (86/%41) ثبت شد. بهطور کلی، اختلاف معنیدار بین حلالهای استون و اتانول در سنجشهای DPPH و FRAP مشاهده شد، در حالی که در سنجش ABTS، تفاوت آماری تنها در برخی نمونهها معنیدار بود. این یافتهها نشان میدهند که ریزجلبکها و درشتجلبکهای مورد بررسی ترکیبات زیستفعال مؤثر داشته و میتوانند بهعنوان منابع طبیعی، مقرونبهصرفه و ایمن ضد اکسایش در صنایع غذایی، آرایشی-بهداشتی و دیگر کاربردهای زیستی استفاده شوند. | ||
| کلیدواژهها | ||
| ریزجلبک؛ درشتجلبک؛ آنتیاکسیدان؛ DPPH؛ FRAP؛ ABTS | ||
| مراجع | ||
|
Ale, M.T., Maruyama, H., Tamauchi, H., Mikkelsen, J.D., Meyer, A.S. 2011. Fucoidan from Sargassum sp. and Fucus vesiculosus reduces cell viability of lung carcinoma and melanoma cells in vitro and activates natural killer cells in mice in vivo. International Journal of Biological Macromolecules 49: 331-336. DOI: 10.1016/j.ijbiomac.2011.05.
Banskota, A.H., Sperker, S., Stefanova, R., McGinn, P.J., O’Leary, S.J. 2019. Antioxidant properties and lipid composition of selected microalgae. Journal of Applied Phycology 31: 309-318. DOI: 10.1080/10408398.2022.2057415.
Benzie, I.F.F., Strain, J.J. 1996. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of “antioxidant power”: The FRAP assay. Analytical Biochemistry 239: 70-76. DOI: 10.1006/abio.1996.0292.
Choochote, W., Suklampoo, L., Ochaikul, D. 2014. Evaluation of antioxidant capacities of green microalgae. Journal of Applied Phycology 26: 43-48. DOI: 10.1007/s10811-013-0084-6.
Coulombier, N., Jauffrais, T., Lebouvier, N. 2021. Antioxidant compounds from microalgae: A review. Marine Drugs 19: 549. DOI: 10.3390/md19100549.
Gupta, S., Cox, S., Rajauria, G., Jaiswal, A.K., Abu-Ghannam, N. 2012. Growth inhibition of common food spoilage and pathogenic microorganisms in the presence of brown seaweed extracts. Food and Bioprocess Technology 5: 1907-1916. DOI: 10.1007/s11947-010-0502-6.
Grubišić, M., Šantek, B., Zorić, Z., Čošić, Z., Vrana, I., Gašparović, B., Ivančić Šantek, M. 2022. Bioprospecting of microalgae isolated from the Adriatic Sea: Characterization of biomass, pigment, lipid & fatty acid composition, and antioxidant & antimicrobial activity. Molecules 27: 1248. DOI: 10.3390/molecules27041248
Hassan Soltan, T., Noroozi, M., Amoozegar, M.A. 2016. A survey on total carotenoids, chlorophyll a and b and antioxidant activity of four strains of green algae isolated from the Golestan coasts (Caspian Sea). New Cellular and Molecular Biotechnology Journal 6: 31-36. DOI: 10.29252/jmp.19.75.254. (In Persian).
Heffernan, N., Smyth, T.J., Soler-Villa, A., Fitzgerald, R.J., Brunton, N.P. 2015. Phenolic content and antioxidant activity of fractions obtained from selected Irish macroalgae species (Laminaria digitata, Fucus serratus, Gracilaria gracilis and Codium fragile). Journal of Applied Phycology 27: 519-530. DOI: 10.1007/s10811-014-0291-9.
Herrero, M., Cifuentes, A., Ibañez, E. 2006. Sub- and supercritical fluid extraction of functional ingredients from plants, food by-products, algae and microalgae: A review. Food Chemistry 98: 136-148. DOI: 10.1016/j.foodchem.2005.05.058
Hwang, J.-Y., Shue, Y.-S., Chang, H.-M. 2001. Antioxidative activity of roasted and defatted peanut kernels. Food Research International 34: 639-647. DOI: 10.1016/j.ultsonch.2005.09.009.
Javadi, S.N. 2021. Comparative study on antimicrobial effect of seaweeds Sargassum ilicifolium, Ulva lactuca and Padina sp. extracts on Escherichia coli and Staphylococcus aureus. Master of Science thesis, Isfahan University of Technology, Isfahan, Iran, 58 p. (In Persian).
Kuda, T., Taniguchi, E., Nishizawa, M., Araki, Y. 2002. Fate of water-soluble polysaccharides in dried Chordafilum (a brown alga) during water washing. Journal of Food Composition and Analysis 15: 3-9. DOI: 10.1006/jfca.2001.1037.
Messyasz, B., Michalak, I., Łęska, B., Schroeder, G., Górka, B., Korzeniowska, K., Lipok, J., Wieczorek, P., Rój, E., Wilk, R. 2018. Valuable natural products from marine and freshwater macroalgae obtained from supercritical fluid extracts. Journal of Applied Phycology 30: 591-603. DOI: 10.1007/s10811-017-1257-5.
Monteiro, M., Santos, R.A., Iglesias, P., Couto, A., Serra, C.R., Gouvinhas, I., Barros, A., Oliva-Teles, A., Enes, P., Díaz-Rosales, P. 2020. Effect of extraction method and solvent system on the phenolic content and antioxidant activity of selected macro- and microalgae extracts. Journal of Applied Phycology 32: 349-362. DOI: 10.1007/s10811-019-01927-1.
Nekhostin Agha, M. Aghaei, A. Rashidnejad, Z. 2016. Measurement of antioxidant activity of methanolic extract of microalgae Dunalilla salina using iron reduction antioxidant capacity method. 11th National Congress and 7th International Congress of Biology of Iran, Tabriz. (In Persian).
Nichols, H.W. 1973. Growth media-freshwater. Culture methods and growth measurements: 7-24.
Olasehinde, T.A., Odjadjare, E.C., Mabinya, L.V., Olaniran, A.O., Okoh, A.I. 2019. Chlorella sorokiniana and Chlorella minutissima exhibit antioxidant potentials. Electronic Journal of Biotechnology 40: 1-9. DOI: 10.1016/j.ejbt.2019.03.008.
O’Sullivan, A.M., O’Callaghan, Y.C., O’Grady, M.N., Queguineur, B., Hanniffy, D., Troy, D.J., Kerry, J.P., O’Brien, N.M. 2011. In vitro and cellular antioxidant activities of seaweed extracts prepared from five brown seaweeds harvested in spring from the west coast of Ireland. Food Chemistry 126: 1064-1070. DOI: 10.1016/j.foodchem.2010.11.127
Prior, R.L., Wu, X., Schaich, K. 2005. Standardized methods for the determination of antioxidant capacity and phenolics in foods and dietary supplements. Journal of Agricultural and Food Chemistry 53: 4290-4302. DOI: 10.1021/jf0502698.
Re, R., Pellegrini, N., Proteggente, A., Pannala, A., Yang, M., Rice-Evans, C. 1999. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radical Biology and Medicine 26: 1231-1237. DOI: 10.1016/s0891-5849(98)00315-3.
Safafar, H., Van Wagenen, J., Møller, P., Jacobsen, C. 2015. Carotenoids, phenolic compounds and tocopherols contribute to antioxidative properties of some microalgae species grown on industrial wastewater. Marine Drugs 13: 7339-7356. DOI: 10.3390/md13127069.
Sarani Yaztapeh, E., Hosseini Tabatabaei, M.R., Abkenar, A.M. 2020. The compression of antioxidant activity and β-carotene extracted from three species of native algae of Oman Sea (Ulva lactuca, Sargassum ilicifolium and Nizimuddinia zanardini). Iranian Scientific Fisheries Journal 29: 53-63. DOI: 10.22092/ISFJ.2021.123538. (In Persian).
Schuler, L.M., Santos, T., Pereira, H., Duarte, P., Gangadhar, K.N. 2020. Improved production of lutein and carotene by thermal and light intensity upshifts in the marine microalga Tetraselmis sp. CTP4. Algal Research 45: 101732. DOI: 10.1016/j.algal.2019.101732
Song, H., Zhang, Q., Zhang, Z., Wang, J. 2010. In vitro antioxidant activity of polysaccharides extracted from Bryopsis plumosa. Carbohydrate Polymers 80: 1057-1061. DOI: 10.1016/j.carbpol.2010.01.024
Uribe, E., Vega-Galvez, A., Garcia, V., Pasten, A., López, J., Goñi, G. 2019. Effect of different drying methods on phytochemical content and amino acid and fatty acid profiles of the green seaweed Ulva spp. Journal of Applied Phycology 31: 1967-1979. DOI: 10.1016/j.meafoo.2025.100275 | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 87 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 80 |
||