| تعداد نشریات | 32 |
| تعداد شمارهها | 840 |
| تعداد مقالات | 8,153 |
| تعداد مشاهده مقاله | 52,500,389 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 8,894,693 |
همافزایی اثر نانوذرات دیاکسید تیتانیوم، ال-کارنیتین، HUFA و لسیتین بر تکثیر مخمر Saccharomyces cerevisiae | ||
| فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان | ||
| دوره 13، شماره 3، آذر 1404، صفحه 81-104 اصل مقاله (692.46 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22124/japb.2025.28879.1556 | ||
| نویسندگان | ||
| رامین مناف فر* 1؛ کبری خانی وش2؛ هدیه یزدانی3؛ رامون ورده4 | ||
| 1دانشیار گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران | ||
| 2کارشناس ارشد زیستفناوری، گروه زیستشناسی، دانشکده علوم، واحد ارومیه، دانشگاه آزاد اسلامی، ارومیه، ایران | ||
| 3دانشجوی دکتری شیلات، گروه تولید و بهرهبرداری آبزیان، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران | ||
| 4کارشناس ارشد زیستفناوری دریا، گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران | ||
| چکیده | ||
| در این پژوهش امکان تحریک تکثیر سلولهای مخمر Saccharomyces cerevisiae با افزودن نانوذرات دیاکسید تیتانیوم (TiO2)، HUFA، لسیتین و ال-کارنیتین مورد بررسی قرار گرفت. مخمر پس از فعالسازی اولیه در محیط کشت پایه، در مرحله اول ابتدا به صورت انفرادی تحت تاثیر غلظتهای مختلف این مواد قرار گرفت و بهترین غلظتها انتخاب شدند. در مرحله دوم بهترین غلظتهای انفرادی برای بررسی تاثیر ترکیبی این مواد بر روی رشد مخمر به کار رفت. در هر دو مرحله میزان تکثیر سلولهای مخمر با اندازهگیری تعداد سلولها و میزان زیست توده تولیده شده بررسی و درصد اسیدهای چرب مخمر در بهترین تیمارها با استفاده از کروماتوگرافی گازی سنجش شد. نتایج نشان داد نانوذرات TiO2 در غلظت 80 میلیگرم در لیتر به طور معنیداری تکثیر مخمر را افزایش داد. اما بهترین رشد مخمر در حضور ال-کارنیتین مربوط به غلظتهای 01/0 و 05/0 میلیگرم در میلیلیتر بود. در حالی که HUFA به تنهایی نتوانست تاثیر خوبی بر تکثیر مخمر داشته باشد، اما در کشت ترکیبی HUFA با لسیتین توانست نتایج خوبی را در تکثیر مخمر داشته باشد. همچنین ترکیب نانوذرات و ال-کارنیتین توانست تکثیر سلولهای مخمر را تحریک کند (05/0P<). بررسی درصد اسیدهای چرب تیمارهای موفق نشان داد در تمامی تیمارها میزان HUFA و PUFA به شدت نسبت به تیمار شاهد بهبود یافت (05/0P<). اما در بررسی میزان زیستتوده، بهترین تیمار انفرادی مربوط به ال-کارنیتین به وزن 67/0 گرم و تیمار ترکیبی HUFA به همراه لسیتین با وزن 75/0 گرم به دست آمد. نتایج این پژوهش میتواند برای کشت انواع مخمر با توانایی تکثیر کم مورد استفاده قرار گیرد. | ||
| کلیدواژهها | ||
| بهینهسازی تکثیر صنعتی؛ لسیتین؛ مخمر؛ نانوذرات دیاکسید تیتانیوم؛ ال-کارنیتین | ||
| موضوعات | ||
| فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان | ||
| مراجع | ||
|
Aguedo M., Beney L., Wache Y., Belin J.M. and Gervais P. 2002. Interaction of odorous lactones with phospholipids: Implications in toxicity towards producing yeast cells. Biotechnology, 24: 1975–1979. doi: 10.1023/A:10211298000 80 Aoki H., Miyamoto N., Furuya Y., Mankura M., Endo Y. and Fujimoto K. 2002. Incorporation and accumulation of docosa-hexaenoic acid from the medium by Pichia methanolica HA-32. Bioscience Biotechnology Biochemistry, 66: 2632–2638. doi: 10.1271/bbb.66.2632 Ayiku S., Shen J., Tan B., Dong X. and Liu H. 2020. Effects of dietary yeast culture on shrimp growth, immune response, intestinal health and disease resistance against Vibrio harveyi. Fish and Shellfish Immunology, 102: 286–295. doi: 10.1016/j.fsi.2020.04.036 Baruah K., Ranjan J., Sorgeloos P. and Bossier P. 2010. Efficacy of heterologous and homologous heat shock protein 70s as protective agents to Artemia franciscana challenged with Vibrio campbellii. Fish and Shellfish Immunology, 1(29): 733–739. doi: 10.1016/j.fsi. 2010.07.011 Bossie M.A. and Martin C.E. 1989. Nutritional regulation of yeast delta-9 fatty acid desaturase activity. Journal of Bacteriology, 171(12): 6409–6413. doi: 10.1128/ jb.171.12.6409-6413.1989 Brown A.N., Smith K., Samuels T.A., Lu J., Obare S.O. and Scott M.E. 2012. Nanoparticles functionalized with ampicillin destroy multiple-antibiotic-resistant isolates of Pseudomonas aeruginosa and Enterobacter aerogenes and methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Applied and Environmental Microbiology, 78(8): 2768–2774. doi: 10.1128/ AEM.06513-11 Chen B., Pan Y., Chen Y., Zhang Z., Yang Z., Zheng M., Lu T., Jiang L. and Qian H., 2022. TiO2 nanoparticles exert an adverse effect on aquatic microbial communities. Science of the Total Environment, 831: 1–11 (154942). doi: 10.1016/j.scitotenv.2022.154942 Chen Y., Sun Z., Liang Z., Xie Y., Su J., Luo Q., Zhu J., Lin Q., Han T. and Wang A. 2020. Effects of dietary fish oil replacement by soybean oil and L-carnitine supplementation on growth performance, fatty acid composition, lipid metabolism and liver health of juvenile largemouth bass, Micropterus salmoides. Aquaculture, 520: 734596. doi: 10.1016/j.aquaculture.2019.734596 Daghan H. 2018. Effects of TiO2 nanoparticles on maize (Zea mays L.) growth, chlorophyll content and nutrient uptake. Applied Ecology and Environmental Research, 16: 6873–6883. doi: 10.15666/aeer/160 5_ 68736883 Duan L.L. Shi Y., Jiang R., Yang Q., Wang Y.Q., Liu P.T., Duan C.Q. and Yan G.L. 2015. Effects of adding unsaturated fatty acids on fatty composition of Saccharomyces cerevisiae and compounds in wine on fatty acid major volatile. South Africa of Enology and Viticulture, 36(2): 285–295. doi: 10.21548/36‑2‑962 Ernesto Cesena C., Vega-Villasante F., Aguirre-Guzman G., Luna-Gonzalez A. and Campa-Cordova A. 2021. Update on the use of yeast in shrimp aquaculture: A minireview. International Aquatic Research, 13(1): 1–16. doi: 10.22034/iar.2021.1904524.1066 Ferraz L., Sauer M., Sousa M.J. and Branduardi P. 2021. The plasma membrane at the cornerstone between flexibility and adaptability: Implication for Saccharomyces cerevisiae as a cell factory. Frontiers in Microbiology, 12: 1–11 (715891). doi: 10.3389/ fmicb.2021.715891 Franken J. and Bauer F.F. 2010. Carnitine supplementation has protective and detrimental effects in Saccharomyces cerevisiae that are genetically mediated. FEMS Yeast Research, 10(3): 270–281. doi: 10.1111/j.1567-1364.2010.00 610.x Gojznikar J., Zdravkovic B., Vidak M., Leskosek B. and Ferk P. 2022. TiO2 nanoparticles and their effects on eukaryotic cells: A double-edged sword. International Journal of Molecular Science, 15(23): 1–18 (12353). doi: 10.3390/ ijms232012353 Hoppel C. 2003. The role of carnitine in normal and altered fatty acid metabolism. American Journal of Kidney Diseases, 41: 4–12. doi: 10.1016/S0272-6386(03)00112-4 Hosseini H.R., Manaffar R. and Ghojaie M. 2017. The effect of zinc oxide nanoparticles and ethanol extracts of hyssop (Hyssopus officinalis) on the growth of Saccharomyces cerevisiae. Journal of Animal Environment, 9(2): 297–304. Jessina G.F., Jaculine-Pereira J. and Petchimuthu M. 2022. Yeast in aquaculture. Biotica Research Today, 4(12): 857–859. Khataee A. and Mansoori G.A. 2011. Nanostructured Titanium Dioxide Materials: Properties, Preparation and Applications. World Scientific Publishing Company, Singapore. 189P. doi: 10.1142/8325 Leiboritz H.E., Benqrson D.A., Mouqle P.D. and Simpson K.L. 1987. Effects of Artemia lipid function on growth and survival of larval in land liver sides. P: 469–476. In: Sorgeloss P., Begtson D.A., Deelier W. and Japers E. (Eds.). Artemia Research and its Application. University Press, Belgium. Ma Y., Liu Z., Hao L., Wu J., Qin B., Liang Z., Ma J., Ke H., Yang H., Li Y. and Cao J. 2022. Oral vaccination using Artemia coated with recombinant Saccharomyces cerevisiae expressing cyprinid herpesvirus-3 envelope antigen includes protective immunity in common carp (Cyprinus carpio var. Jian) larvae. Research in Veterinary Science, 130: 184–192. doi: 10.1016/j.rvsc.2020.03.013 Mokhtarnejad L. and Farzaneh M. 2020. A review on yeast roles and applications on biological control of plant diseases [In Persian]. Biocontrol in Plant Protection, 8(1): 137–157. doi: 10.22092/bcpp. 2020.124040 Nielsen J. 2019. Yeast cells handle stress by reprogramming their metabolism. Nature, 572: 184–185. doi: 10.1038/d41586-019-02288-y Ono Y. and Iwahashi H. 2022. Titanium dioxide nanoparticles impart protection from ultraviolet irradiation to fermenting yeast cells. Biochemistry and Biophysics Reports, 30: 1–5 (101221). doi: 10.1016/j.bbrep.2022.101221 Patnaik P., Nady N., Barlit H., Guihan A. and Labunskyy V.M. 2024. Lifespan regulation by targeting heme signaling in yeast. GeroScience, 46(5): 5235–5245. doi: 10.1007/s11357-024-01218-9 Perricone V., Sandrini S., Irshad N., Savoini G., Comi M. and Agazzi A. 2022. Yeast-derived products: the role of hydrolyzed yeast and yeast culture in poultry nutrition, a review. Animals, 12(11): 1–20 (1426). doi: 10.3390/ani12111426 Pitt J.I. and Hocking A.D. 1997. Fungi and Food Spoilage. Blackie Academic and Professional, UK. 520P. doi: 10.1007/978-0-387-92207-2 Pourbozorgi-Rudsari N., Madadkar-Haghjou M. and Ghiasvand A. 2022. Physiological responses of Spirulina plantensis to nano-particles of TiO2 and citrate [In Persian]. Iranian Journal of Plant Biology, 14(1): 39–62. doi: 10.221 08/ijpb.2023.135148.1297 Seifi M.M., Iranmanesh E., Asadollahi M.A. and Arpanaei A. 2020. Biotransformation of benzaldehyde into l-phenylacetyl carbinol using magnetic nano-particles-coated yeast cells. Biotechnology Letters, 42(4): 597–603. doi: 10.1007/s10529-020-02798-0 Serov D.A., Gritsaeva A.V., Ynbaev F.M., Simakin A.V. and Gudkov S.V. 2024. Review of antimicrobial properties of titanium dioxide nanoparticles. International Journal of Molecular Sciences, 25(19): 1–51 (10519). doi: 10.3390/ijms251910 519 Shekarchi B., Nekuei-Fard A. and Manaffar R. 2020. Feeding Artemia larvae with yeast heat shock proteins 82 (HSPs82) to enhance the resistance against abiotic stresses (hyperosmotic and high temperature). Iranian Journal of Fisheries Science, 19(1): 19–30. doi: 10.22092/ijfs.2019.118229 Stewart G.G. 2017. The structure and function of the yeast cell wall, plasma membrane and periplasm. P: 55–75. In: Stewart G.G. (Ed.). Brewing and Distilling Yeasts. The Yeast Handbook. Springer, Switzerland. doi: 10.1007/978-3-31 9-69126-8_5 Sukmanowski J., Viguie J.R., Nolting B. and Royer F.X. 2005. Light absorption enhancement by nanoparticles. Journal of Applied Physics, 97(10): 1–7. doi: 10.1063/ 1.1899249 Usatii A., Chiselita N. and Efremova N. 2016. The evaluation of nanoparticles ZnO and TiO2 effects on Saccharomyces cerevisiae CNMN-Y-20 yeast strain. Acta Universitatis Cibiniensis Series (E), 85: 85–92. doi: 10.1515/aucft-2016-0007 Vibhute P., Jaabir M. and Sivakamavalli J. 2023. Applications of nanoparticles in aquaculture. P: 127–155. In: Kirthi A.V., Loganathan K. and Karunasagar I. (Eds.). Nanotechnological Approaches to the Advancement of Innovations in Aquaculture. Springer, Switzerland. doi: 10.1007/978-3-031-15519-2_8 Wang R., Lorantfy B., Fusco S., Olson L. and Franzen C.J. 2021. Analysis of methods for quanti-fying yeast cell concentration in complex lignocellulosic ferment-ation processes. Scientific Reports, 11(1): 1–12 (11293). doi: 10.1038/s 41598-021-90703-8 Wang J., Du R., Qin J., Wang S., Wang W., Li H. and Pang Q. 2003. Effect of yeast chromium and L-carnitine on lipid metabolism of broiler chickens. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences, 16(12): 1809–1815. doi: 10.5713/ajas.2003.1809 Zhang L., Zhang P., Tan P., Zu D., Wang L., Ding Z. and Shao Q. 2024. Yarrowia lipolytica as a promising protein source for pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei) diet: Impact on growth performance, metabolism, antioxidant capacity, and apparent digestibility. Frontiers in Marine Science, 11: 1–12 (1370371 | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 11 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 6 |
||