| تعداد نشریات | 32 |
| تعداد شمارهها | 852 |
| تعداد مقالات | 8,256 |
| تعداد مشاهده مقاله | 52,579,813 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 9,090,766 |
بررسی تأثیر چند القاکننده زیستی مقاومت در گیاه گندم در برابر قارچ عامل سفیدک پودری Blumeria graminis f. sp. tritici | ||
| تحقیقات غلات | ||
| دوره 15، شماره 3 - شماره پیاپی 56، مهر 1404، صفحه 251-267 اصل مقاله (383.77 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22124/cr.2025.30794.1867 | ||
| نویسندگان | ||
| فریده فرجاللهی1؛ ولیاله باباییزاد* 2؛ محمد علی تاجیک قنبری3؛ علی دهستانی4 | ||
| 1دانشجو دکتری، گروه گیاهپزشکی، دانشکده علوم زراعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران | ||
| 2استاد، گروه گیاهپزشکی، دانشکده علوم زراعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران | ||
| 3دانشیار، گروه گیاهپزشکی، دانشکده علوم زراعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران | ||
| 4دانشیار، پژوهشکده ژنتیک و زیستفناوری طبرستان، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران | ||
| چکیده | ||
| مقدمه: گندم (Triticum aestivum)یکی از مهمترین محصولات غذایی جهان است که با چالشهای متعددی از جمله بیماریهای قارچی مانند سفیدک پودری ناشی از Blumeria graminis f. sp. tritici (Bgt) مواجه است. این بیماری میتواند عملکرد و کیفیت گندم را کاهش دهد. روشهای رایج کنترل بیماری شامل استفاده از قارچکشها و افزایش مقاومت ژنتیکی گیاه است، اما این روشها با محدودیتهایی مانند مقاومت بیمارگرها و نگرانیهای زیست محیطی مواجهاند. در نتیجه، توجه به روشهای جایگزین مانند کنترل زیستی با استفاده از قارچها و باکتریهای مفید افزایش یافته است. این عوامل نه تنها با بیمارگرها مقابله میکنند، بلکه سیستم ایمنی گیاه را نیز تقویت میکنند. همچنین، مقاومت غیرمیزبانی بهعنوان یک استراتژی پایدار و گسترده برای مقابله با بیمارگرهای ناسازگار مورد توجه قرار گرفته و القای آن میتواند سطح بالایی از مقاومت پایدار در گیاه ایجاد کند. در نهایت، تقویت پاسخهای دفاعی مانند تولید گونههای فعال اکسیژن و فعالسازی آنزیمهای مرتبط با آنها، نقش مهمی در مقابله گیاه با بیماریهای قارچی دارد. مواد و روشها: در این مطالعه، اثر چند عامل زیستی شامل قارچهای Tricoderma harzianum، Alternaria alternata، Serendipita indica و Blumeria graminis f. sp. hordei(Bgh) و باکتریهای Pseudomonas fluorescens و Bacillus subtilis بر پاسخ رقمهای حساس و مقاوم گندم به بیماری سفیدک پودری مورد مطالعه قرار گرفت. برای این منظور از دو رقم گندم احسان و تیرگان بهترتیب بهعنوان رقمهای حساس و مقاوم استفاده شد. آزمایش بهصورت فاکتوریل در قالب طرح پایه کاملاً تصادفی با سه تکرار انجام شد. تیمارهای عوامل زیستی در مرحله دوبرگی روی گیاهچهها اسپری شدند. نمونهبرداری از برگ گیاهان شاهد و تیمار شده با عوامل کنترل زیستی برای اندازهگیری فعالیت آنزیمهای کاتالاز و پلی فنل اکسیداز و بیان ژن PAL در زمانهای صفر، 24، 48 و 72 ساعت پس از مایهزنی با قارچ Bgt انجام شد. ارزیابی تعداد کلنیهای تشکیل شده بیمارگر، هفت روز بعد از مایهزنی با قارچ Bgt صورت گرفت. تجزیه واریانس دادهها و مقایسه میانگینها با روش آزمون چنددامنهای دانکن در سطح احتمال پنج درصد با استفاده از نرمافزار SPSS انجام و نمودارها با استفاده از نرمافزار Excel رسم شدند. یافتههای تحقیق: نتایج این مطالعه نشان داد که تیمارهای مختلف عوامل زیستی در دو رقم حساس و مقاوم گندم در پاسخ به قارچ عامل سفیدک پودری تأثیر متفاوتی داشتند. تعداد کلنیهای قارچ در رقم مقاوم بهطور معنیداری کمتر از رقم حساس بود و کاربرد عوامل زیستی موجب کاهش کلنیهای بیمارگر شد. در میان تیمارها، قارچ Serendipita indica در رقم مقاوم کمترین تعداد کلنی را القا کرد. فعالیت آنزیم کاتالاز در رقم حساس پس از تیمار با Pseudomonas fluorescens بیشترین فعالیت را نشان داد که نسبت به شاهد 160.7 درصد افزایش داشت، در حالیکه در رقم مقاوم تیمارهای P. fluorescens و B. graminis f. sp. hordei افزایش حدود 62 درصد را القا کردند. همچنین، فعالیت آنزیم پلیفنل اکسیداز در رقم حساس پس از تیمار با S. indica بیشترین مقدار را نشان داد که نسبت به شاهد 190.2 درصد افزایش داشت. در رقم مقاوم، بیشترین فعالیت این آنزیم مربوط به تیمارهای P. fluorescens و S. indica بود که بهترتیب حدود 155.24 و 145.65 درصد بیشتر از تیمار شاهد بودند. علاوه بر این، نتایج بیان ژن PAL نشان داد که بیشتر عوامل زیستی موجب القای بیان ژن PAL پس از مایهزنی با قارچ Bgt شدند، اما بیشترین بیان در تیمار P. fluorescens در 24 ساعت پس از مایهزنی با قارچ Bgt ثبت شد. نتیجه گیری: نتایج این مطالعه نشان داد که عوامل زیستی تأثیر متفاوتی بر مقاومت به بیماری و فعالیت آنزیمی در گندم دارند و برخی از این عوامل میتوانند بهعنوان یک گزینه مناسب برای مدیریت بیماری سفیدک سطحی در گندم در نظر گرفته شوند. | ||
| کلیدواژهها | ||
| آنزیمهای آنتیاکسیدان؛ کنترل زیستی؛ مقاومت القایی | ||
| مراجع | ||
|
Aebi, H. (1984). Catalase in vitro. Methods in Enzymology, 105, 121-126. doi: 10.1016/s0076-6879(84)05016-3.##Ahangar, L., Babaeizad, V., Ranjbar, G. A., NajafiZarrini, H., & Biabani, A. (2016). Study of PR gene expression pattern related to induced resistance to powdery mildew in susceptible wheat genotype after treating with salicylic acid. Journal of Crop Breeding, 17(42), 208–217. [In Persian]. doi: 10.18869/acadpub.jcb.8.17.218.##Allario, T., Fourquez, A., Magnin-Robert, M., Siah, A., Maia-Grondard, A., Gaucher, M., & Baltenweck, R. (2023). Analysis of defense-related gene expression and leaf metabolome in wheat during the early infection stages of Blumeria graminis f. sp. tritici. Phytopathology, 113(8), 1537-1547. doi: 10.1094/PHYTO-10-22-0364-R.##Barna, B., Abdou, S., Manninger, K., & Király, Z. (1998). Systemic acquired resistance in wheat against stem and leaf rusts. Acta Phytopathologica et Entomologica Hungarica, 33, 31-36.##Barna, B., Máté, G., Preuss, J., Harrach, B. D., Gullner, G., Manninger, K., & Fodor, J. (2022). Defence responses triggered by Blumeria graminis f. sp. hordei in non‐host wheat genotypes results in a decrease in Puccinia triticina infection. Journal of Phytopathology, 170(2), 82-90. doi: 10.1111/jph.13057.##Benítez, T., Rincón, A. M., Limón, M. C., & Codon, A. C. (2004). Biocontrol mechanisms of Trichoderma strains. International Microbiology, 7(4), 249-260.##Bi, Q., Lu, F., Wu, J., Liu, X., Han, X., & Zhao, J. (2025). The control effect and induced disease resistance mechanism of Bacillus tequilensis on wheat powdery mildew. Biological Control, 105698. doi: 10.1016/j.biocontrol.2025.105698.##Boamah, S., Zhang, S., Xu, B., Li, T., & Calderón-Urrea, A. (2021). Trichoderma longibrachiatum (TG1) enhances wheat seedlings tolerance to salt stress and resistance to Fusarium pseudograminearum. Frontiers in Plant Science, 12, 741231. doi: 10.3389/fpls.2021.741231.##Bradford, M. M. (1976). A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry, 72(1-2), 248-254.##Chen, X., Koumoutsi, A., Scholz, R., Schneider, K., Vater, J., Süssmuth, R., Piel, J., & Borriss, R. (2009). Genome analysis of Bacillus amyloliquefaciens FZB42 reveals its potential for biocontrol of plant pathogens. Journal of Biotechnology, 140(1-2), 27-37. doi: 10.1016/j.jbiotec.2008.10.011.##Choudaker, K. R., Singh, V. K., Kashyap, A. S., Patel, A. V., Sameriya, K. K., Yadav, D., Manzar, N., Kamil, D., Prasad, L., & Saharan, M. (2024). Evaluating the efficacy of microbial antagonists in inducing resistance, promoting growth, and providing biological control against powdery mildew in wheat. Frontiers in Microbiology, 15, 1419547. doi: 10.3389/fmicb.2024.1419547.##Dangl, J. L., & Jones, J. D. (2001). Plant pathogens and integrated defence responses to infection. Nature, 411(6839), 826-833. doi: 10.1038/35081161.##Dean, R., Van Kan, J. A., Pretorius, Z. A., Hammond‐Kosack, K. E., Di Pietro, A., Spanu, P. D., Rudd, J. J., Dickman, M., Ellis, J., & Foster, G. D. (2012). The Top 10 fungal pathogens in molecular plant pathology. Molecular Plant Pathology, 13(4), 414-430. doi: 10.1111/j.1364-3703.2011.00783.x.##Deshmukh, S., & Kogel, K. H. (2007). Piriformospora indica protects barley from root rot caused by Fusarium graminearum/Piriformospora indica schützt Gerste vor der von Fusarium graminearum verursachten Wurzelfäule. Journal of Plant Diseases & Protection, 114, 263-268. doi: 10.1007/BF03356227.##Dumanović, J., Nepovimova, E., Natić, M., Kuča, K., & Jaćević, V. (2021). The significance of reactive oxygen species and antioxidant defense system in plants: A concise overview. Frontiers in Plant Science, 11, 552969. doi: 10.3389/fpls.2020.552969.##Egusa, M., Miwa, T., Kaminaka, H., Takano, Y., & Kodama, M. (2013). Nonhost resistance of Arabidopsis thaliana against Alternaria alternata involves both pre-and postinvasive defenses but is collapsed by AAL-toxin in the absence of LOH2. Phytopathology, 103(7), 733-740. doi: 10.1094/PHYTO-08-12-0201-R.##El-Sayed, W. S., Akhkha, A., El-Naggar, M. Y., & Elbadry, M. (2014). In vitro antagonistic activity, plant growth promoting traits and phylogenetic affiliation of rhizobacteria associated with wild plants grown in arid soil. Frontiers in Microbiology, 5, 651. doi: 10.3389/fmicb.2014.00651.##Gao, H., Niu, J., & Li, S. (2018). Impacts of wheat powdery mildew on grain yield & quality and its prevention and control methods. American Journal of Agriculture & Forestry, 6(5), 141-147. doi: 10.11648/j.ajaf.20180605.14.##Gerhardson, B. (2002). Biological substitutes for pesticides. Trends in Biotechnology, 20(8), 338-343. doi: 10.1016/S0167-7799(02)02021-8.##Hafez, Y. M., El-Nagar, A. S., Elzaawely, A. A., Kamel, S., & Maswada, H. F. (2018). Biological control of Podosphaera xanthii the causal agent of squash powdery mildew disease by upregulation of defense-related enzymes. Egyptian Journal of Biological Pest Control, 28, 1-8. doi: 10.1186/s41938-018-0058-8.##He, J., Liu, Y., Yuan, D., Duan, M., Liu, Y., Shen, Z., Yang, C., Qiu, Z., Liu, D., Wen, P., Huang, J., Fan, D., Xiao, S., Xin, Y., Chen, X., Jiang, L., Wang, H., Yuan, L., & Wan, J. (2020). An R2R3 MYB transcription factor confers brown planthopper resistance by regulating the phenylalanine ammonia-lyase pathway in rice. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 117(1), 271-277. doi: 10.1073/pnas.1902771116.##He, P., Cui, W., & Peng, L. (2022). Biocontrol efficacy of Bacillus velezensis HC-8 against powdery mildew of honeysuckle caused by Erysiphe lonicerae var. Lonicerae. Biological Control, 166, 104834. doi: 10.1016/j.biocontrol.2021.104834.##Hou, L., Wang, L. N., Wu, X. L., Gao, W., Zhang, J. X., & Huang, C. Y. (2019). Expression patterns of two PAL genes of Pleurotus ostreatus across developmental stages and under heat stress. BMC Microbiology, 19(1), 231. doi: 10.1186/s12866-019-1618-4.##Hu, Z., Qiuxia, Z., Ling, H., Huajun, Z., Zuohua, R., & Erming, L. (2019). Isolation and identification of Bacillus tequilensis JN-369 and antimicrobial substance analysis. Chinese Journal of Pesticide Science, 21(1), 52-58. doi: 10.16801/j.issn.1008-7303.2019.0007.##Ivanov, S., Miteva, L., Alexieva, V., Karjin, H., & Karanov, E. (2005). Alterations in some oxidative parameters in susceptible and resistant wheat plants infected with Puccinia recondita f. sp. tritici. Journal of Plant Physiology, 162(3), 275-279. doi: 10.1016/j.jplph.2004.07.010.##Kashyap, A. S., Manzar, N., Nebapure, S. M., Rajawat, M. V. S., Deo, M. M., Singh, J. P., Kesharwani, A. K., Singh, R. P., Dubey, S. C., & Singh, D. (2022). Unraveling microbial volatile elicitors using a transparent methodology for induction of systemic resistance and regulation of antioxidant genes at expression levels in chili against bacterial wilt disease. Antioxidants, 11(2), 404. doi: 10.3390/antiox11020404.##Kazerooni, E. A., Maharachchikumbura, S. S., Al-Sadi, A. M., Kang, S.-M., Yun, B.-W., & Lee, I.-J. (2021). Biocontrol potential of Bacillus amyloliquefaciens against Botrytis pelargonii and Alternaria alternata on Capsicum annuum. Journal of Fungi, 7(6), 472. doi: 10.3390/jof7060472.##Kogel, K. H., & Langen, G. (2005). Induced disease resistance and gene expression in cereals. Cellular Microbiology, 7(11), 1555-1564. doi: 10.1111/j.1462-5822.2005.00592.x.##Kthiri, Z., Jabeur, M. B., Machraoui, M., Gargouri, S., Hiba, K., & Hamada, W. (2020). Coating seeds with Trichoderma strains promotes plant growth and enhance the systemic resistance against Fusarium crown rot in durum wheat. Egyptian Journal of Biological Pest Control, 30, 1-10. doi: 10.1186/s41938-020-00338-6.##Li, L., Guo, N., Feng, Y., Duan, M., & Li, C. (2022). Effect of Piriformospora indica-induced systemic resistance and basal immunity against Rhizoctonia cerealis and Fusarium graminearum in wheat. Frontiers in Plant Science, 13, 836940. doi: 10.3389/fpls.2022.836940.##Liu, H., Jiang, W., Bi, Y., & Luo, Y., (2005). Postharvest BTH treatment induces resistance of peach (Prunus persica L. cv. Jiubao) fruit to infection by Penicillium expansum and enhances activity of fruit defense mechanisms. Postharvest Biology & Technology, 35(3), 263-269. doi: 10.1016/j.postharvbio.2004.08.006.##Liu, M., Braun, U., Takamatsu, S., Hambleton, S., Shoukouhi, P., Bisson, K. R., & Hubbard, K. (2021). Taxonomic revision of Blumeria based on multi-gene DNA sequences, host preferences and morphology. Mycoscience, 62(3), 143-165. doi: 10.47371/mycosci.2020.12.003.##Liu, R., Lv, X., Wang, X., Yang, L., Cao, J., Dai, Y., Wu, W., & Wu, Y. (2023). Integrative analysis of the multi-omics reveals the stripe rust fungus resistance mechanism of the TaPAL in wheat. Frontiers in Plant Science, 14, 1174450. doi: 10.3389/fpls.2023.1174450.##Livak, K. J., & Schmittgen, T. D. (2001). Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2-ΔΔCT method. Methods, 25(4), 402-408. doi: 10.1006/meth.2001.1262.##Makarewicz, O., Farouk, A., Rosner, K., Greiner, R., Bochow, H., & Borriss, R. (2002). Extracellular phytase activity of Bacillus amyloliquefaciens FZB45 contributes to its plant-growth-promoting effect. Microbiology, 148(7), 2097-2109. doi: 10.1099/00221287-148-7-2097.##Manzar, N., Singh, Y., Kashyap, A. S., Sahu, P. K., Rajawat, M. V. S., Bhowmik, A., Sharma, P. K., & Saxena, A. K. (2021). Biocontrol potential of native Trichoderma spp. against anthracnose of great millet (Sorghum bicolour L.) from Tarai and Hill regions of India. Biological Control, 152, 104474. doi: 10.1016/j.biocontrol.2020.104474.##Mapuranga, J., Chang, J., & Yang, W. (2022). Combating powdery mildew: Advances in molecular interactions between Blumeria graminis f. sp. tritici and wheat. Frontiers in Plant Science, 13, 1102908. doi: 10.3389/fpls.2022.1102908.##Martinelli, J., Brown, J., & Wolfe, M. (1993). Effects of barley genotype on induced resistance to powdery mildew. Plant Pathology, 42(2), 195-202. doi: 10.1111/j.1365-3059.1993.tb01491.x.##McDonald, B. A., & Linde, C. (2002). Pathogen population genetics, evolutionary potential, and durable resistance. Annual Review of Phytopathology, 40(1), 349-379. doi: 10.1146/annurev.phyto.40.120501.101443.##Narusaka, Y., Narusaka, M., Seki, M., Ishida, J., Shinozaki, K., Nan, Y., Park, P., Shiraishi, T., & Kobayashi, M. (2005). Cytological and molecular analyses of non-host resistance of Arabidopsis thaliana to Alternaria alternata. Molecular Plant Pathology, 6(6), 615-627. doi: 10.1111/j.1364-3703.2005.00310.x.##Niu, J., Cao, Y., Lin, X., Leng, Q., Chen, Y., & Yin, J. (2018). Field and laboratory screening of anthurium cultivars for resistance to foliar bacterial blight and the induced activities of defence-related enzymes. Folia Horticulturae, 30(1), 129-137. doi: 10.2478/fhort-2018-0013.##Otani, H., Kohmoto, K., Kodama, M., & Nishimura, S. (1991). Role of host-specific toxins in the pathogenesis of Alternaria alternata. In: Patil, S. S. (Ed.). Molecular Strategies of Pathogens and Host Plants. Springer, New York. pp. 139-149. doi: 10.1007/978-1-4612-3084-7_12.##Panstruga, R., & Kuhn, H. (2019). Mutual interplay between phytopathogenic powdery mildew fungi and other microorganisms. Molecular Plant Pathology, 20(4), 463-470. doi: 10.1111/mpp.12771.##Paul, R., Basandrai, A. K., & Tyagi, P. (1999). Identification of resistance genes against Erysiphe graminis tritici in Indian and exotic wheats . Indian Journal of Genetics & Plant Breeding, 59(02), 125-134. ##Paul, R., Basandrai, A. K., & Tyagi, P. (2000). Virulence spectrum of Erysiphe graminis f. sp. tritici in Himachal Pradesh. Indian Phytopathology, 53(4), 415-418. ##Pazarlar, S., Cetinkaya, N., Bor, M., & Ozdemir, F. (2017). Ozone triggers different defence mechanisms against powdery mildew (Blumeria graminis DC. Speer f. sp. tritici) in susceptible and resistant wheat genotypes. Functional Plant Biology, 44(10), 1016-1028. doi: 10.1071/FP17038.##Pina, A., Errea, P. (2008). Differential induction of phenylalanine ammonia-lyase gene expression in response to in vitro callus unions of Prunus spp. Plant Physiology, 165(7), 705-714. doi: 10.1016/j.jplph.2007.05.015.##Qiang, X., Weiss, M., Kogel, K. H., & Schäfer, P. (2012). Piriformospora indica—a mutualistic basidiomycete with an exceptionally large plant host range. Molecular Plant Pathology, 13(5), 508-518. doi: 10.1111/j.1364-3703.2011.00764.x.##Reuveni, R. (2017). Biochemical markers for disease resistance. In: Singh, U. S., & Singh, R. P. (Eds.). Molecular Methods in Plant Pathology. pp. 99-114. CRC Press. doi: 10.1201/9780203746523.##Reyad, N. E. H. A., Azoz, S. N., Ali, A. M., & Sayed, E. G. (2022). Mitigation of powdery mildew disease by integrating biocontrol agents and shikimic acid with modulation of antioxidant defense system, anatomical characterization, and improvement of squash plant productivity. Horticulturae, 8(12), 1145. doi: 10.3390/horticulturae8121145.##Saadaoui, M., Faize, M., Bonhomme, L., Benyoussef, N. O., Kharrat, M., Chaar, H., Label, P., & Venisse, J. S. (2023). Assessment of Tunisian trichoderma isolates on wheat seed germination, seedling growth and fusarium seedling blight suppression. Microorganisms, 11(6), 1512. doi: 10.3390/microorganisms11061512.##Safaei, M., Jorkesh, A., & Olfati, J. (2022). Chemical and biological products for control of powdery mildew on cucumber. International Journal of Vegetable Science, 28(3), 233-238. doi: 10.1080/19315260.2021.1935388.##Sahay, N., & Varma, A. (1999). Piriformospora indica: A new biological hardening tool for micropropagated plants. FEMS Microbiology Letters, 181(2), 297-302. doi: 10.1111/j.1574-6968.1999.tb08858.x.##Samobor, V., Vukobratović, M., & Marijan, J. (2006). Effect of powdery mildew attack on quality parameters and experimental bread baking of wheat. Acta Agriculturae Slovenica, 87(2), 381-391. doi: 10.14720/aas.2006.87.2.15116.##Savary, S., Willocquet, L., Pethybridge, S. J., Esker, P., McRoberts, N., & Nelson, A. (2019). The global burden of pathogens and pests on major food crops. Nature Ecology & Evolution, 3(3), 430-439. doi: 10.1038/s41559-018-0793-y.##Singh, U. B., Malviya, D., Singh, S., Kumar, M., Sahu, P. K., Singh, H. V., Kumar, S., Roy, M., Imran, M., Rai, J. P., Sharma, A. K., & Saxena, A. K. (2019). Trichoderma harzianum- and methyl jasmonate-induced resistance to Bipolaris sorokiniana through enhanced phenylpropanoid activities in bread wheat (Triticum aestivum L.). Frontiers in Microbiology, 10, 1697. doi: 10.3389/fmicb.2019.01697.##Van Eck, L., Schultz, T., Leach, J. E., Scofield, S. R., Peairs, F. B., Botha, A. M., & Lapitan, N. L. V. (2010). Virus-induced gene silencing of WRKY53 and an inducible phenylalanine ammonia-lyase in wheat reduces aphid resistance. Plant Biotechnology Journal, 8(9), 1023-1032. doi: 10.1111/j.1467-7652.2010.00539.x.##Yuan, M., Huang, Y., Ge, W., Jia, Z., Song, S., Zhang, L., & Huang, Y. (2019). Involvement of jasmonic acid, ethylene and salicylic acid signaling pathways behind the systemic resistance induced by Trichoderma longibrachiatum H9 in cucumber. BMC Genomics, 20, 1-13. doi: 10.1186/s12864-019-5513-8.##Zhan, C., Li, Y., Li, H., Wang, M., Gong, S., Ma, D., & Li, Y. (2022). Phylogenomic analysis of phenylalanine ammonia-lyase (PAL) multigene family and their differential expression analysis in wheat (Triticum aestivum L.) suggested their roles during different stress responses. Frontiers in Plant Science, 13, 982457. doi: 10.3389/fpls.2022.982457.##Zhang, S., Liu, J., Xu, B., & Zhou, J. (2021). Differential responses of Cucurbita pepo to Podosphaera xanthii reveal the mechanism of powdery mildew disease resistance in pumpkin. Frontiers in Plant Science, 12, 633221. doi: 10.3389/fpls.2022.982457.##Zhu, M., Riederer, M., & Hildebrandt, U. (2017). Very-long-chain aldehydes induce appressorium formation in ascospores of the wheat powdery mildew fungus Blumeria graminis. Fungal Biology, 121(8), 716-728. doi: 10.1016/j.funbio.2017.05.003.## | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 260 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 32 |
||