
تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 792 |
تعداد مقالات | 7,554 |
تعداد مشاهده مقاله | 24,670,517 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 7,582,892 |
بیوتکنیک زادآوری و تولیدمثل کپور هندی کاتلا (Catla catla ) با هورمون سنتتیک القای تخمریزی | ||
فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان | ||
دوره 12، شماره 3، آذر 1403، صفحه 117-132 اصل مقاله (429.85 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22124/japb.2024.26545.1526 | ||
نویسندگان | ||
محمد یونس زاده فشالمی* 1؛ سید عبدالصاحب مرتضوی زاده2؛ همایون حسین زاده صحافی3 | ||
1استادیار پژوهشکده آبزیپروری آبهای جنوب کشور، اهواز، ایران | ||
2کارشناس ارشد شیلات، پژوهشکده آبزیپروری آبهای جنوب کشور، اهواز، ایران | ||
3استاد موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، تهران، ایران | ||
چکیده | ||
ماهی کاتلا (Catla catla) یکی از گونههای اصلی کپورماهیان هندی است که در راستای تنوع گونهای به کشور وارد شد. در راستای افزایش جمعیت، تکثیر گونه کاتلا انجام شد. در این مطالعه 16 قطعه مولد ماده با میانگین وزن و طول کل به ترتیب 01/76±33/3183 گرم و 05/1±33/568 میلیمتر بررسی شد. درجه حرارت مناسب 5/29-29 درجه سانتیگراد ثبت شد. از هورمون سنتتیک القای تخمریزی اواپاس (OvaPAS) برای تحریک تخمریزی مولدین استفاده شد. تزریق به صورت عضلانی و در یک مرحله انجام گرفت. مقدار تزریق در مولدین ماده 5/0 میلیلیتر در کیلوگرم وزن ماهی بود. تزریق در مولدین نر 2 ساعت پس از تزریق ماده به مقدار 2/0 میلیلیتر در کیلوگرم انجام شد. 100 درصد مولدین به مرحله تخمریزی رسیدند. دوره پنهان 08/0±11/6 ساعت به طول انجامید. ماهی کاتلا تخمهای غیر چسبنده داشت. تعداد تخم در گرم و تعداد تخم در میلیلیتر به ترتیب 29/21±16/1271 و 22/35±83/1259 عدد بود. میانگین تخم استحصال شده از مولدین 62/52±33/581 گرم ثبت شد. اندازه تخم استحصال شده، تخم لقاح یافته و تخم آبکشیده به ترتیب 64/9±17/1080، 39/14±62/1641 و 65/24±46/3370 میکرومتر بود. میانگین درصد لقاح 33/2±01/91، درصد تخمگشایی 7/1±66/80 و درصد بازماندگی لارو 83/2±81/70 محاسبه شد. زمان شروع خروج لارو از تخم پس از 16 ساعت و 20 دقیقه محاسبه شد. اندازه لارو تازه تخمگشایی شده 06/0±55/4 میلیمتر بود. نتایج به دست آمده از این مطالعه میتواند در مراکز تکثیر برای تولید انبوه به کارگرفته شود. | ||
کلیدواژهها | ||
: کاتلا؛ Catla catla؛ تکثیرمصنوعی؛ اواپاس؛ مولدین | ||
موضوعات | ||
فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان | ||
مراجع | ||
Alikunhi K.H. 1957. Fish Culture in India. Indian Council of Agricultural Research, India. 144P. Arabaci M. and Sari M. 2004. Induction of ovulation in endemic pearl mullet (Chalcalburnus tarichi), living in the highly alkaline Lake Van, using GnRHa ([D-Ser (tBu)6, Pro9-Net]-GnRH) combined with haloperidol. Aquaculture, 238: 529–535. doi: 10.1016/j.aquaculture.2004.05.004 Bosak Kahkesh F., Yooneszadeh Feshalami M., Amiri F. and Nickpey M. 2010. Effect of Ovaprim, Ovatide, HCG, LHRH-A2, LHRHA2+CPE and carp pituitary in benni (Barbus sharpeyi) artificial breeding. Global Veterinaria, 5(4): 209–214. Bosak Kahkesh F., Yooneszadeh M., Amiri F. and Nickpey M. 2011. Survey of different hormones on final maturation in shirbut (Barbus grypus Heckel, 1843). World Journal of Fish and Marine Sciences, 3(6): 548–552. Brzuska E. 2021. Reproduction effectiveness of carp (Cyprinus carpio L.) from the Hungarian W breeding line after stimulating ovulation with spawning inducing agents of natural (CPH, hCG, PMSG) and/or synthetic origin (Ovopel, Dagin, Ovaprim, mGnRH-a). Aquaculture, 532: 1–11 (736023). doi: 10.1016/j.aquacul ture.2020.736023 Chakrabarty R.D. and Murty D.S. 1972. Life history of Indian major carps, Cirrhinus mrigala (HAM.), Catla catla (HAM.) and Labeo rohita (HAM.). Journal of the Inland Fisheries Society of India, 6: 133–161. Dorafshan S., Mostafavi H. and Amiri B.M. 2003. Induction of spawning in common carp (Cyprinus carpio) using pituitary extract and GnRH analogue in combination with domperidone. Iranian Journal of Biotechnology, 1: 213–217. Drori S., Ofir M., Sivan B.L. and Yaron Z. 1994. Spawning induction in common carp (Cyprinus carpio) using pituitary extract or GnRH superactive analogue combined with metho-clopramide: Analysis of hormone profile, progress of oocyte maturation and dependence on temperature. Aquaculture, 119: 393–407. doi: 10.1016/0044-8486 (94)90303-4 FAO. 2022. The State of World Fisheries and Aquaculture 2022. Towards Blue Transformation. FAO, Italy. 266P. doi: 10.4060/cc04 61en Haniffa M.A.K. and Sridhar S. 2002. Induced spawning of spotted murrel (Channa punctatus) and catfish (Heteropneustes fossilis) using human chorionic gonado-tropin and synthetic hormone (ovaprim). Veterinarski Arhiv, 72(1): 51–56. Heyrati F.P., Mostafavi H., Toloee H. and Dorafshan S. 2007. Induced spawning of kutum (Kamenskii, 1901) using (D-Ala6, Pro9 –Net) GnRHa combined with domperidone. Aquaculture, 265: 288–293. doi: 10.1016/j.aquaculture. 2006.12.011 Hill J.E., Kilgore K.H., Pouder D.B., Powell J.F.F., Watson C.A. and Yanong R.P.E. 2009. Survey of Ovaprim use as a spawning aid in ornamental fishes in the United States as administered through the University of Florida Tropical Aquaculture Laboratory. North American Journal of Aquaculture, 71(3): 206–209. doi: 10.1577/A08-020.1 Hosseinzadeh H., Ahmadnejad M. and Yalaqi S. 2018. A review of hormones used in aquaculture and various hormone administration methods in Iran. Advanced Aquaculture Science Journal, 3(1): 34–17. Jhingran V.G. 1966. Synopsis of biological data on Catla catla (Hamilton, 1822). FAO, Italy. 178P. Jhingran V.G. and Khan H.A. 1979. Synopsis of biological data on the mrigal Cirrhinus mrigala (Hamilton, 1822). FAO, Italy. 78P. Jhingran V.G. and Pullin R.S.V. 1985. A Hatchery Manual for the Common, Chines and Indian Major Carps. Asian Development Bank, USA. 171P. Khan H.A. and Jhingran V.G. 1975. Synopsis of biological data on rohu, Labeo ruhita (Hamilton, 1822). FAO, Italy. 100P. Khan R.A. 1972. Studies on the biology of some important major carps. Ph.D. Thesis, Aligarh Muslim University, India. 185P. Khaval A., Dezhandiyan S., Mahisefat F., Amiri A. and Sharifian M. 2015. The effect of optimum dosage of Ovaprim injection on artificial spawning of Esox lucius. Iranian Scientific Fisheries Journal, 23: 1–15. doi: 10. 22092/isfj.2015.103165 Kouril J., Mraz J., Jitka J. and Tomislav B. 2008. Hormonal induction of tench (Tinca tinca L.) ovulation with the same treatments over two consecutive reproductive seasons. International Journal of Ichthyology, 32(2): 61–61. Kulikovsky Z., Martin F.J.B and Yaron Z. 1996. A comparison of two spawning inducing agent for common carp. Israel Journal Aquaculture Bamidgeh, 48: 108–111. doi: 10.1016/0044-8486(94)903 03-4 Leroy Creswell R. 2000. Aquaculture Desk Reference. Florida Aqua Farm Inc., USA. 206P. Miah M.I., Harun M.S., Rahman M.M., Haque M.R. and Hossain M.A. 2009. Study on the embryonic and larval development of an endangered species of bata (Labeo bata). International Journal of Sustainable Crop Production, 4(1): 72–82. Mikolajczyk T., Chyb J., Sokolowska M., Enright W., Epler P., Filipak M. and Berton B. 2003. Attemps to induce LH surge and ovulation in common carp (Cyprinus carpio) by differential application of a potent, GnRH analogue, azagly-nafaelin, under laboratory, commercial hatchery and natural conditions. Aquaculture, 223: 141–157. doi: 10.1016/S0044-8486(03)00158-3 Mohammadian T., Kochanin P., Niko S., Sheikhul-Islami M., Bita M., Eskandari G. and Abhari H. 2009. Comparison of the effect of GnRH hormone analog along with antidopamine domperidone by Linpe method, with common carp pituitary extract on the reproductive indices of Barbus sharpeyi (In Persian). Iran Veterinary Journal, 5(1): 70–80. Mohammidian Avizi B., Arshadi A. and Rahdari A. 2023. Comparative effects of Ovaprim™ and Ovapass™ hormones on some reproductive characteristics of Schizothorax zarudnyi. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 22(3): 643–657. doi: 10.22092/ijfs. 2023.129699 Mookerjee H.K. 1945. Life history of some major carps of Bengal. Science Culture, 10(9): 400–402. More P.R., Bhandare R.Y., Shinde S.E., Pathan T.S. and Sonawane D.L. 2010. Comparative study of synthetic hormones Ovaprim and carp pituitary extract used in Induced breeding of Indian major carps. Libyan Agriculture Research Center Journal International, 1: 288–295. Mortazavizadeh S.A., Moazadi J., Youneszadeh Fashalami M. and Jarfi A. 2010. Biotechnics of artificial propagation of barbel fish (Barbus xanthopterus). Iranian Fisheries Scientific Journal, 19(4): 137–142. Mortezavizadeh S.A., Yooneszadeh Feshalami M. and Bosak Kahkesh F. 2010. Effect of GnRHa (Ala6, des-Gly10 mGnRHa), LHRH-a induced spawning of maturing A (des-Gly10, [D-ala6] LH-RH ethylamide) and carp pituitary in artificial propagation of Gattan, Barbus xanthopterus (Heckel, 1843). World Journal of Fish and Marine Science, 2(4): 280–284. Mylonas C.C. and Zohar Y. 2007. Use of GnRHa-delivery systems for the control of reproduction in fish. Reviews in Fish Biology and Fisheries, 10: 463–491. doi: 10.10 23/A:1012279814708 NACA. 1989. Intergrated fish farming in china. NACA Technical Manual 7. A World Food Day Publication of The Network of Aquaculture Centers in Asia and the Pacific, Thailand. 278P. Naeem M., Salam A., Ali M., Mehreen M., Ali M., Jamshed Khan M., Mazhar Ayaz M., Ishtiaq A. and Zuberi A. 2011. Breeding performance of sustain-able fish Ctenopharyngodon idella through single intramuscular injection of Ovaprim-C at Bahawalpur, Pakistan. African Journal of Biotechnology, 10(57): 12315–12318. doi: 10.5897/AJB.900 0088 Naeem M., Salam A., Diba F. and Saghir A. 2005. Fecundity and induced spawning of silver carp, Hypophthalmichthys molitrix by using a single intramuscular injection of Ovaprim-C at fish hatchery Islamabad. Pakistan Journal of Biological Science, 8(8): 1126–1130. doi: 10.3923/pjbs.2005. 1126.1130 Nandeesha M.C., Das S.K., Nathaniel D.E. and Varghese T.J. 1990. Breeding of carps with Ovaprim in India. Asian Fisheries Society, India. 41P. Natarajan A.V. and Jhingran A.G. 1963. On the biology of Catla catla (Ham.) from tile river Yamuna. Proceeding of the National Institute of Sciences of India, 29: 326–355. Peter R.E., Lin H.R. and Van Der Kraak G. 1988. Induced ovulation and spawning in cultured fresh water fish in China: Advanced in application of GnRH analogue and dopamine antagonists. Aquaculture, 74: 1–10. Podhorec P. and Kouril J. 2009. Induction of final oocyte maturation in Cyprinidae fish by hypothalamic factors: A review. Veterinarni Medicina, 54(3): 97–110. doi: 10.17221/50/2009-VETMED Rainis S. and Ballestrazzi R. 2005. The control of reproduction in finfish species through GnRH treatments. Italian Journal of Animal Science, 4: 345–353. doi: 10.4081/ijas.2005.345 Sarkar U.K., Negi R.S., Deepak P.K., Singh S.P., Srivastava S.M. and Roy D. 2004. Captive breeding of vulnerable Indian carp Cirrhinus reba with Ovaprim for conservation of wild populations. Aquaculture Asia, 9: 5–7. doi: 10.14 798/73.1.786 Sehgal H.S. and Toor H.S. 1991. Offspring fitness and fecundity of an Indian major carp, Labeo rohita (Ham), in relation to egg size. Aquaculture, 97: 269–279. doi: 10.1016/0044-8486(91)90269-D Weil C., Fostier A. and Billard R. 1986. Induced spawning (ovulation and spermiation) in carp and related species. P: 119–137. In: Billard R. and Marcel J. (Eds.). Aquaculture of Cyprinids. INRA, France. doi: 10.1016/0044-8486(94) 90303-4
| ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 76 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 47 |