
تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 769 |
تعداد مقالات | 7,292 |
تعداد مشاهده مقاله | 10,760,100 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 7,149,690 |
اثر روش تثبیت و تنش شوری (کلرید سدیم) بر شاخصهای رشد، تجمع کاروتنوئید و کربوهیدرات در ریزجلبک Dunaliella salina | ||
فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان | ||
دوره 12، شماره 3، آذر 1403، صفحه 23-46 اصل مقاله (1.08 M) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22124/japb.2024.25973.1520 | ||
نویسندگان | ||
مسعود حیدری زاده* 1؛ نگار الفتی2؛ سید فصیح صادقی2 | ||
1استادیار گروه علوم زیستی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه کردستان، سنندج، ایران | ||
2کارشناس ارشد بیوشیمی، گروه علوم زیستی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه کردستان، سنندج، ایران | ||
چکیده | ||
ریزجلبکها برای تولید ترکیبات با ارزش طبیعی مورد استفاده قرار میگیرند. بازده کم و هزینه بالا، پتانسیل تجاری ریزجلبکها را محدود میکند. اخیرا تکنیکهای بیحرکتسازی و افزایش بهرهوری تولید مورد توجه قرار گرفتهاند. در این پژوهش، تاثیر غلظتهای مختلف نمک (کلرید سدیم)، روش تثبیت و مدت دوره رشد بر زیتوده، کربوهیدرات، کاروتنوئید، کلروفیلهای a و b در ریزجلبک Dunaliella salina ارزیابی شد. نتایج نشان داد در شرایط آزاد رشد ریزجلبک به طور معنیداری بیشتر از شرایط تثبیت بود. در شوری 150 و 300 گرم در لیتر رشد ریزجلبک به طور معنیداری کاهش یافت. بیشترین زیتوده در شوری 75 گرم در لیتر و شرایط کشت آزاد اندازهگیری شد. مقدار کاروتنوئید در شوری 75 گرم در لیتر و شرایط بدون تثبیت از تیمارهای دیگر بیشتر بود. کربوهیدرات در شوری 30 گرم در لیتر به طور معنیداری از تیمارهای دیگر بیشتر بود. در غلظت 150 گرم در لیتر، کربوهیدرات در شرایط تثبیت به طور معنیداری بیشتر بود. به نظر میرسد ترکیب بستر و همچنین روش اعمال تثبیت یک عامل اثرگذار باشد. تنش شوری یک روش ساده و ارزان برای القای تولید کاروتنوئید است. پژوهش در زمینه بهینهسازی ماده مورد استفاده و همچنین روش اعمال تثبیت برای افزایش بازده تولید ترکیبات باارزش ضروری به نظر میرسد. | ||
کلیدواژهها | ||
روش تثبیت؛ Dunaliella salina؛ شوری؛ کاروتنوئید | ||
موضوعات | ||
فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان | ||
مراجع | ||
Ahmad A., Banat F., Alsafar H. and Hasan S.W. 2023. Recent breakthroughs in integrated bio-molecular and biotechnological approaches for enhanced lipid and carotenoid production from microalgae. Phytochemistry Reviews, 22(4): 993–1013. doi: 10.1007/s11101-022-09804-5 Arnon A.N. 1967. Method of extraction of chlorophyll in the plants. Agronomy Journal, 23: 112–121. Ben-Amotz A., Polle J.E.W. and Subba Rao D.V. 2009. The Alga Dunaliella: Biodiversity, Physiology, Genomics and Biotechnology. CRC Press, USA. 575P. Calderon N.D.G., Bayona K.C.D. and Garces L.A. 2018. Immobilization of the green microalga Botryococcus braunii in polyester wadding: Effect on biomass, fatty acids, and exopolysaccharide production. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 14: 80–87. doi: 10.1016/j.bcab.2018.02.006 Gallego-Cartagena E., Castillo-Ramirez M. and Martinez-Burgos W. 2019. Effect of stressful conditions on the carotenogenic activity of a Colombian strain of Dunaliella salina. Saudi Journal of Biological Sciences, 26(7): 1325–1330. doi: 10.1016/j.sjbs.2019.07.010 Gomez P.I., Barriga A., Cifuentes A.S. and Gonzalez M.A. 2003. Effect of salinity on the quantity and quality of carotenoids accumulated by Dunaliella salina (strain CONC-007) and Dunaliella bardawil (strain ATCC 30861) chlorophyta. Biological Research, 36(2): 185–192. doi: 10.4067/S0716-97602003000200008 Hashemi A., Pajoum Shariati F., Delavari Amrei H. and Heydari Nasab A. 2021. The effect of instantaneous and slow-release salt stress methods on beta-carotene production within Dunaliella salina cells. Iranian Journal of Chemistry and Chemical Engineering, 40(5): 1642–1652. doi: 10.30492/IJCCE.2020.107691.3581 Hosseini Tafreshi A. and Shariati M. 2009. Dunaliella biotechnology: Methods and applications. Journal of Applied Microbiology, 107(1): 14–35. doi: 10.1111/j.1365-2672.20 09.04153.x Jimenez C.A.R.L.O.S. and Pick U. 1994. Differential stereoisomer compositions of β, β-carotene in thylakoids and in pigment globules in Dunaliella. Journal of Plant Physiology, 143(3): 257–263. doi: 10.1016/S0176-1617(11)81628-7 Kaparapu J. and Geddada M.N.R. 2020. Commercial applications of algae in the field of biotechnology. P: 229–246. In: Arumugam M., Kathiresan S. and Nagaraj S. (Eds.). Applied Algal Biotechnology. Nova Science Publishers, India. Lamers P.P., Janssen M., De Vos R.C., Bino R.J. and Wijffels R.H. 2008. Exploring and exploiting carotenoid accumulation in Dunaliella salina for cell-factory applications. Trends in Biotechnology, 26(11): 631–638. Mahdian Y. 2022. The effect of CO2 pump on the improvement of carotenoid production in Dunaliella salina microalgae (In Persian). M.Sc. Thesis, University of Kurdistan, Iran. 101P. Mathimani T., Kumar T.S., Chandrasekar M., Uma L. and Prabaharan D. 2017. Assessment of fuel properties, engine performance and emission characteristics of outdoor grown marine Chlorella vulgaris BDUG 91771 biodiesel. Renewable Energy, 105: 637–646. doi: 10.1016/j.renene.2016.12.090 Mallick N. 2020. Immobilization of microalgae. P: 373–391. In: Guisan J.M. (Ed.). Immobilization of Enzymes and Cells: Methods in Biotechnology. Humana Press, USA. Maleki L., Malek M. and Palm H.W. 2015. Four new species of Acanthobothrium Van Beneden, 1850 (Cestoda: Onchoproteo-cephalidea) from the guitarfish, Rhynchobatus cf. djiddensis (Elasmobranchii: Rhynchobatidae), from the Persian Gulf and Gulf of Oman. Folia Parasitologica, 62(12): 11–15. doi: 10.14411/fp.20 15.012 Moreno-Garrido I. 2013. Microalgal immobilization methods. P: 327–347. In: Guisan J.M. (Ed.). Immobilization of Enzymes and Cells: Methods in Biotechnology. Humana Press, USA. doi: 10.1007/ 978-1-62703-550-7 Mishra A., Mandoli A. and Jha B. 2008. Physiological characteriz-ation and stress-induced metabolic responses of Dunaliella salina isolated from salt pan. Journal of Industrial Microbiology and Biotechnology, 35(10): 1093–1101. doi: 10.1007/s10295-008-0387-9 Mohammadi K.E. and Arashrad F. 2016. Effect of different salinity levels on β-carotene production by Dunaliella sp. isolates from the Maharlu Lake, Iran. Medical Laboratory Journal, 10(5): 58–68. doi: 10.18869/acadpub.mlj.10.5.58 Nguyen A., Tran D., Ho M., Louime C., Tran H. and Tran D. 2016. High light stress regimen on Dunaliella salina strains for carotenoids induction. Integrative Food, Nutrition and Metabolism, 3: 347–350. doi: 10.15761/IFNM.10001 58 Olfati N. 2022. The effect of immobilization technique and salinity stress on carotenoid production in Dunaliella salina microalgae (In Persian). M.Sc. Thesis, University of Kurdistan, Iran. 110P. Pasqualetti M., Bernini R., Carletti L., Crisante F. and Tempesta S. 2011. Salinity and nitrate concentration on the growth and carotenoids accumulation in a strain of Dunaliella salina (Chlorophyta) cultivated under laboratory conditions. Transitional Waters Bulletin, 4(2): 94–104. doi: 10.1285/i1825229Xv4n2p42 Sadeghi S.F. 2021. Effect of immobilization techniques and salinity stress on growth indicator and carbohydrate production in micro algae Dunaliella salina (In Persian). M.Sc. Thesis, University of Kurdistan, Iran. 98P. Tran D., Doan N., Louime C., Giordano M. and Portilla S. 2014. Growth, antioxidant capacity and total carotene of Dunaliella salina DCCBC15 in a low cost enriched natural seawater medium. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 30: 317–322. doi: 10.1007/s11274-013-1413-2 Wu M., Zhu R., Lu J., Lei A., Zhu H., Hu Z. and Wang J. 2020. Effects of different abiotic stresses on carotenoid and fatty acid metabolism in the green microalga Dunaliella salina Y6. Annals of Microbiology, 70(1): 1–9. doi: 10.1186/s13213-020-01588-3 Ye Z.W., Jiang J.G. and Wu G.H. 2008. Biosynthesis and regulation of carotenoids in Dunaliella: Progresses and prospects. Biotechnology Advances, 26(4): 352–360. doi: 10.1016/j.biotechadv. 2008.03.004 Zarandi-Miandoab L., Hejazi M.A., Bagherieh-Najjar M.B. and Chaparzadeh N. 2019. Optimiz-ation of the four most effective factors on β-carotene production by Dunaliella salina using response surface methodology. Iranian Journal of Pharmaceutical Research, 18(3): 1566–1579. doi: 10.22037/ijpr.2019.1100752
| ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 47 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 19 |