دانشگاه گیلان
معاونت پژوهش و فناوری دانشگاه گیلان
انتشارات دانشگاه گیلان

 آمار

تعداد نشریات31
تعداد شماره‌ها792
تعداد مقالات7,554
تعداد مشاهده مقاله24,670,509
تعداد دریافت فایل اصل مقاله7,582,892
نوری, جاوید, نیکوخصلت, سعید, خانی, مصطفی, وکیلی, جواد. (1403). تاثیر تمرین مقاومتی،HIIT و ترکیبی (HIIT و مقاومتی) بر microRNAهای سرمی مرتبط با چاقی در پسران نوجوان چاق و دارای اضافه وزن. فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان, 14(2), 55-71. doi: 10.22124/jme.2024.28049.372
جاوید نوری; سعید نیکوخصلت; مصطفی خانی; جواد وکیلی. "تاثیر تمرین مقاومتی،HIIT و ترکیبی (HIIT و مقاومتی) بر microRNAهای سرمی مرتبط با چاقی در پسران نوجوان چاق و دارای اضافه وزن". فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان, 14, 2, 1403, 55-71. doi: 10.22124/jme.2024.28049.372
نوری, جاوید, نیکوخصلت, سعید, خانی, مصطفی, وکیلی, جواد. (1403). 'تاثیر تمرین مقاومتی،HIIT و ترکیبی (HIIT و مقاومتی) بر microRNAهای سرمی مرتبط با چاقی در پسران نوجوان چاق و دارای اضافه وزن', فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان, 14(2), pp. 55-71. doi: 10.22124/jme.2024.28049.372
نوری, جاوید, نیکوخصلت, سعید, خانی, مصطفی, وکیلی, جواد. تاثیر تمرین مقاومتی،HIIT و ترکیبی (HIIT و مقاومتی) بر microRNAهای سرمی مرتبط با چاقی در پسران نوجوان چاق و دارای اضافه وزن. فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان, 1403; 14(2): 55-71. doi: 10.22124/jme.2024.28049.372

تاثیر تمرین مقاومتی،HIIT و ترکیبی (HIIT و مقاومتی) بر microRNAهای سرمی مرتبط با چاقی در پسران نوجوان چاق و دارای اضافه وزن

سوخت و ساز و فعالیت ورزشی
مقاله 5، دوره 14، شماره 2، آبان 1403، صفحه 55-71    اصل مقاله (488.44 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی Released under (CC BY-NC) license I Open Access I
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22124/jme.2024.28049.372
نویسندگان
جاوید نوری1؛ سعید نیکوخصلت2؛ مصطفی خانی* 3؛ جواد وکیلی2
1دانشجوی دکتری فیزیولوژی ورزشی دانشگاه تبریز، تبریز، ایران
2دانشیار فیزیولوژی ورزشی دانشگاه تبریز، تبریز، ایران
3استادیار فیزیولوژی ورزشی دانشگاه تبریز، تبریز، ایران
چکیده
مقدمه: هدف مطالعه حاضر، تعیین تاثیر هشت هفته تمرین تناوبی شدید، تمرین مقاومتی و ترکیبی بر بیان microRNAهای مرتبط با چاقی در پسران نوجوان چاق بود. مواد و روش‌ها: در یک مطالعه نیمه‌تجربی، 36 پسر سالم کم‌تحرک (سن؛ 15-13 سال؛ BMI: 31-28 kg/m2؛ درصد چربی: 36-32 درصد) انتخاب و سپس بر اساس توان هوازی و درصد چربی در چهار گروه همگن تمرین تناوبی شدید، مقاومتی و ترکیبی و کنترل (بدون فعالیت) قرار گرفتند. هر پروتکل تمرینی به مدت چهار جلسه در هفته برای هشت هفته انجام شد. هر جلسه HIIT شامل 8-6 تکرار دویدن 60-30 ثانیه‌ای با 85-80 درصد (سه دقیقه استراحت بین هر تکرار) بود. تمرین مقاومتی شامل حرکات عضلات اصلی بالاتنه، تنه و پایین­تنه با شدت 70 تا 90 درصد از 1RM بود. تمرین ترکیبی شامل ترکیب دو جلسه در هفته تمرین مقاومتی و تمرین HIIT در مجموع چهار جلسه تمرین  در هفته بود. تغییرات هر یک از شاخص‌‌‌های مورد مطالعه طی مراحل مختلف اندازه‌گیری با آزمون‌های تحلیل واریانس یک‌راهه (ANOVA)، کواریانس و تعقیبی بونفرونی با نرم‌افزار SPSS22 در سطح معنی‌‌داری کمتر از 05/0 بررسی ‌شد. نتایج: پس از تائید همگنی گروه‌ها در متغیر پژوهش (05/0<P)، بر اساس نتایج بعد از اتمام هر سه پروتکل تمرینی میزان بیان miRNA-133a، miRNA-1 و miRNA-143 نسبت به مرحله پیش آزمون به طور معنی‌داری کاهش یافت (05/0>P). همچنین، تنها در گروه ترکیبی تفاوت معنی‌داری بین تغییرات بیان miRNA-133a و miRNA-1 با گروه تمرین مقاومتی مشاهده شد (05/0>P)، اما میزان بیان miRNA-133a، miRNA-1 و miRNA-143  تفاوتی بین گروه ترکیبی و گروه تمرین HIIT نداشت (05/0<P). نتیجه‌گیری: به نظر می‌رسد استفاده از ترکیب تمرین HIIT و مقاومتی بتواند زمینه کنترل بهتر وزن بدن و چاقی را فراهم کند.
کلیدواژه‌ها
چاقی؛ microRNA؛ تمرینات تناوبی شدید؛ تمرین مقاومتی؛ تمرین ترکیبی
مراجع
  1. Kansra AR, Lakkunarajah S, Jay MS. Childhood and adolescent obesity: a review. Frontiers in pediatrics. 2021;8:581461.
  2. Zucker I, Zloof Y, Bardugo A, Tsur AM, Lutski M, Cohen Y, et al. Obesity in late adolescence and incident type 1 diabetes in young adulthood. Diabetologia. 2022;65(9):1473-82.
  3. B Afshar, F., Nasiri, E., Samadi, A. The Effect of Eight Weeks of Interval Sprint Training on Oxidative Stress Indices of Hippocampus in Male Wistar Rats. Journal Of Metabolism and Exercise, 2022; 12(1): 59-72. doi: 10.22124/JME.2023.23994.267. (in persian)
  4. Montano M. MicroRNAs: miRRORS of health and disease. Translational Research. 2011;157(4):157-62.
  5. Ma F, Cao D, Liu Z, Li Y, Ouyang S, Wu J. Identification of novel circulating miRNAs biomarkers for healthy obese and lean children. BMC Endocrine Disorders. 2023;23(1):238.
  6. Kilic ID, Dodurga Y, Uludag B, Alihanoglu YI, Yildiz BS, Enli Y, et al. MicroRNA-143 and-223 in obesity. Gene. 2015;560(2):140-2.
  7. Liu J, Wang H, Zeng D, Xiong J, Luo J, Chen X, et al. The novel importance of miR-143 in obesity regulation. International Journal of Obesity. 2023;47(2):100-8.
  8. Mooren FC, Viereck J, Krüger K, Thum T. Circulating microRNAs as potential biomarkers of aerobic exercise capacity. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 2013:ajpheart. 00711.2013.
  9. Salmasi, M., Tofighi, A., Asri Rezaei, S., Tolouei Azar, J. (Response of Liver Oxidative Indices in Bisphenol A-Infected Rats to Eight Weeks of Aerobic Training with and without Zinc Oxide Supplementation). Journal Of Metabolism and Exercise, 2022; 12(2): -. doi: 10.22124/jme.2023.24007.270. (in persian)
  10. Bye A, Røsjø H, Aspenes ST, Condorelli G, Omland T, Wisløff U. Circulating microRNAs and aerobic fitness–the HUNT-Study. PloS one. 2013;8(2):e57496.
  11. McCarthy JJ, Esser KA. MicroRNA-1 and microRNA-133a expression are decreased during skeletal muscle hypertrophy. Journal of applied physiology. 2007;102(1):306-13.
  12. Care A, Catalucci D, Felicetti F, Bonci D, Addario A, Gallo P, et al. MicroRNA-133 controls cardiac hypertrophy. Nature medicine. 2007;13(5).
  13. Leuenberger N, Robinson N, Saugy M. Circulating miRNAs: a new generation of anti-doping biomarkers. Analytical and bioanalytical chemistry. 2013;405(30):9617-23.
  14. Banzet S, Chennaoui M, Girard O, Racinais S, Drogou C, Chalabi H, et al. Changes in circulating microRNAs levels with exercise modality. Journal of applied physiology. 2013;115(9):1237-44.
  15. Mahdavi, A., Pouzesh Jadidi, R., Azali Alamdari, K. Effects of high-intensity interval training and curcumin supplementation on the amount of heat shock proteins 60 and 20 and the expression of microRNAs 21 and 30 in heart tissue of rats exposed to arsenic. Journal Of Metabolism and Exercise, 2022; 12(1): 35-58. doi: 10.22124/JME.2023.21057.223. (in persian)
  16. Nielsen S, Scheele C, Yfanti C, Åkerström T, Nielsen AR, Pedersen BK, et al. Muscle specific microRNAs are regulated by endurance exercise in human skeletal muscle. The Journal of physiology. 2010;588(20):4029-37.
  17. Tonevitsky AG, Maltseva DV, Abbasi A, Samatov TR, Sakharov DA, Shkurnikov MU, et al. Dynamically regulated miRNA-mRNA networks revealed by exercise. BMC physiology. 2013;13(1):9.
  18. Wahl P, Mathes S, Köhler K, Achtzehn S, Bloch W, Mester J. Acute metabolic, hormonal, and psychological responses to different endurance training protocols. Hormone and Metabolic Research. 2013;45(11):827-33.
  19. Tanner J, Whitehouse R. Clinical longitudinal standards for height, weight, height velocity, weight velocity, and stages of puberty. Archives of disease in childhood. 1976;51(3):170-9.
  20. Drummond MJ, McCarthy JJ, Fry CS, Esser KA, Rasmussen BB. Aging differentially affects human skeletal muscle microRNA expression at rest and after an anabolic stimulus of resistance exercise and essential amino acids. American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism. 2008;295(6):E1333-E40.
  21. Safdar A, Abadi A, Akhtar M, Hettinga BP, Tarnopolsky MA. miRNA in the regulation of skeletal muscle adaptation to acute endurance exercise in C57Bl/6J male mice. PloS one. 2009;4(5):e5610.
  22. Habibi P, Alihemmati A, NourAzar A, Yousefi H, Mortazavi S, Ahmadiasl N. Expression of the Mir-133 and Bcl-2 could be affected by swimming training in the heart of ovariectomized rats. Iranian journal of basic medical sciences. 2016;19(4):381.
  23. Mooren FC, Viereck J, Krüger K, Thum T. Circulating microRNAs as potential biomarkers of aerobic exercise capacity. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 2013;306(4):H557-H63.
  24. Abdellatif M. The role of microRNA-133 in cardiac hypertrophy uncovered. Am Heart Assoc; 2010.
  25. Simaitis S, Schulte-Körne B, Schiffer T, Bloch W, Predel H-G, Brixius K, et al. Evidence for training-induced changes in miRNA levels in the skeletal muscle of patients with type 2 diabetes mellitus. Frontiers in Physiology. 2020;11.
  26. Jordan SD, Krüger M, Willmes DM, Redemann N, Wunderlich FT, Brönneke HS, et al. Obesity-induced overexpression of miRNA-143 inhibits insulin-stimulated AKT activation and impairs glucose metabolism. Nature cell biology. 2011;13(4):434-46.
  27. Cui SF, Wang C, Yin X, Tian D, Lu QJ, Zhang CY, et al. Similar responses of circulating microRNAs to acute high-intensity interval exercise and vigorous-intensity continuous exercise. Frontiers in physiology. 2016;7:102.
  28. Aoi W, Ichikawa H, Mune K, Tanimura Y, Mizushima K, Naito Y, et al. Muscle-enriched microRNA miR-486 decreases in circulation in response to exercise in young men. Frontiers in physiology. 2013;4:80.
  29. Baggish AL, Hale A, Weiner RB, Lewis GD, Systrom D, Wang F, et al. Dynamic regulation of circulating microRNA during acute exhaustive exercise and sustained aerobic exercise training. The Journal of physiology. 2011;589(16):3983-94.
  30. Wahl P, Wehmeier UF, Jansen FJ, Kilian Y, Bloch W, Werner N, et al. Acute Effects of Different Exercise Protocols on the Circulating Vascular microRNAs-16,-21, and-126 in Trained Subjects. Frontiers in Physiology. 2016;7.
  31. Nielsen S, Åkerström T, Rinnov A, Yfanti C, Scheele C, Pedersen BK, et al. The miRNA plasma signature in response to acute aerobic exercise and endurance training. PloS one. 2014;9(2):e87308.
 

آمار
تعداد مشاهده مقاله: 457
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 74


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب